不同采收期的芒果叶中总黄酮的变化规律研究

时间:2022-07-07 05:19:48

不同采收期的芒果叶中总黄酮的变化规律研究

[摘要] 目的 研究不同采收期芒果叶中总黄酮变化规律。 方法 采用乙醇回流法从芒果叶中提取黄酮类物质,并用紫外分光光度法测定不同采收期芒果叶的总黄酮含量。 结果 芒果叶中总黄酮的含量随采收季节不同呈一定幅度变化,其中以1、11月总黄酮含量最高,5~7月含量较低。 结论 不同采收期是影响芒果叶中总黄酮质量的重要因素。

[关键词] 不同采收期;芒果叶;紫外分光光度法;总黄酮

[中图分类号] R927.2 [文献标识码] A [文章编号] 1674-4721(2013)02(c)-0074-02

芒果叶为漆树科植物芒果(Mangifera indica L.)的叶。芒果叶味酸、甘,性凉、平,具有平喘、止咳、祛痰、抗炎、镇痛、保肝利胆、抗脂质过氧化、抗病毒、抗肿瘤、抗菌等作用,对中枢神经系统和心血管系统等疾病也都有明显疗效[1-2]。芒果叶主要有效成分为黄酮类成分[3-4],有关黄酮类成分的提取报道已有文献报导[5],本文报道了不同采收期芒果叶中总黄酮变化规律,为深入研究开发芒果叶中总黄酮成分提供科学依据。

1 仪器与试药

1.1 仪器

UV-1800紫外-可见分光光度仪(上海美谱达仪器厂);AG285电子分析天平(瑞士METTLER公司)。

1.2 试药

芒果叶采摘于广东省东莞市芒果种植园,经广东医学院药学院闫冲博士鉴定。采摘后于50℃烘箱干燥备用,每周采摘1次,持续1年。芦丁标准品购自南京替斯艾么中药研究所(批号:TCM027-091210);乙醇等试剂均为分析纯。

2 方法与结果

2.1 对照品溶液的制备

精密称取干燥芦丁对照品13.40 mg,用50%乙醇定容至100 mL,精密吸取此溶液并用50%乙醇分别稀释成0.080 4、0.026 8 g/L的芦丁对照品溶液,备用。

2.2 供试品溶液的制备

精密称取不同采收期芒果叶各0.5 g,揉碎,用100 mL50%乙醇80℃回流3 h,冷却过滤,即得供试品溶液[6]。

2.3 标准曲线的绘制

准确吸取0.026 8 g/L的芦丁对照溶液1.00、2.00 mL,0.080 4 g/L的对照液1.00、2.00、3.00、4.00 mL分别置于10 mL容量瓶中,准确吸取0.134 g/L的芦丁溶液2.00 mL,至10 mL容量瓶中,分别加入5%亚硝酸钠溶液0.5 mL,摇匀,放置6 min后加入10%硝酸铝溶液0.5 mL,摇匀,放置6 min;再加入5%氢氧化钠溶液4 mL,分别用50%乙醇加至刻度,摇匀,放置15 min后,以空白试剂为对照调0,于紫外分光光度计510 nm处测定,结果显示其吸光度分别为:0、0.025、0.051、0.088、0.183、0.262、0.366、0.867,通过最少二乘法得回归方程Y = 0.092 1 X - 0.000 1[Y:浓度(g/L);X:吸光度(A510 nm)],R2 = 0.999 1,证明线性关系良好。

2.4 精密度试验

精密量取0.032 16 g/L的对照品溶液1 mL于10 mL容量瓶中,平行制备6份,按“2.3”项下操作步骤,加入亚硝酸钠、硝酸铝及氢氧化钠溶液,于紫外分光光度计510 nm处测定吸光度分别为0.366、0.366、0.366、0.367、0.366、0.366(RSD = 0.11%,n = 6),表明精密度良好。

2.5 重复性试验

精密称取同一采收期(采摘于08年10月18日)的芒果叶6份(每份0.5 g),揉碎,分别用100 mL 50%乙醇80℃回流3 h,冷却过滤。精密吸取滤液1 mL于10 mL容量瓶中,按“2.3”操作步骤,测定吸光度分别为0.442、0.397、0.432、0.430、0.450、0.408(RSD = 4.74%,n = 6),表明重复性良好。

2.6 稳定性试验

精密吸取芒果叶0.5 g(采摘于08年10月18日)提取液1 mL于10 mL容量瓶中,按“2.3”操作步骤,于紫外分光光度计510 nm处每10分钟测定吸光度1次,结果分别为:0.397、0.397、0.398、0.397、0.396、0.396、0.396。表明样品在60 min内稳定,RSD = 0.19%(n = 7)。

2.7 回收率试验

精密吸取芒果叶(采摘于09年2月21日,总黄酮含量为9.31%)提取液0.50 mL共9份,分别加入芦丁对照品适量(0.18、0.23、0.28 mg)各3份,按“2.3”项下操作步骤,于紫外分光光度计510 nm处测定吸光度分别为0.466、0.467、0.466、0.526、0.526、0.528、0.589、0.591、0.59,计算回收率,平均加样回收率为109.30%,RSD = 0.84%(n = 9)。

2.8 芒果叶中总黄酮测定

精密称取芒果叶0.5 g,揉碎,用100 mL50%乙醇80℃回流3 h,冷却过滤。精密吸取滤液0.50 mL于10 mL容量瓶中,按“2.3”操作步骤,于紫外分光光度计510 nm处测定吸光度。由标准曲线求出各供试品中的总黄酮浓度,并按月汇总计算不同采收期的芒果中总黄酮百分含量,结果表明,不同采收期芒果叶中黄酮的含量有差别,其中以1月、11月份总黄酮含量较高,5~7月含量最低。见表1及图1。

3 讨论

有文献报导芒果中的黄酮类化合物具有免疫调节及抗氧化作用[7-8]:研究结果证实芒果皮黄酮200 mg/(kg·d)、400 mg/(kg·d)剂量组可提高小鼠血液碳粒廓清速率;在体外能显著增强小鼠腹腔巨噬细胞吞噬中性红的能力,免疫调节及抗氧化作用均呈剂量效应关系。王晓波等[9]研究发现芒果叶中总黄酮对O2-及·OH自由基具有一定的清除能力,清除能力与浓度有明显的量效关系,即随浓度增加而增加。芒果叶中总黄酮类成分体外可抑制H2O2诱导肝匀浆的脂质过氧化作用,能减少H2O2诱导的红细胞溶血的发生。研究结果提示芒果中的黄酮类化合物具有免疫调节及抗氧化作用,芒果叶中富含黄酮类成分,具有广泛的开发前景和利用价值,有进一步综合开发的价值。

芒果果实以其形、色、香、味俱佳而有“果王”之称,在热带、亚热带地区著名出口水果中占有重要的地位。我国是芒果主要生产国之一, 广泛分布于广东、台湾、广西、海南以及福建、云南、四川等省、自治区,且四季均可采摘,芒果叶与芒果果实中均含黄酮类成分,芒果叶药材资源非常丰富。但目前缺少芒果叶开发的文献报导,限制了其临床应用。应合理开发芒果叶资源,加强其药效基础研究,为临床应用提供充分的药学、药理学依据, 亦有待在系统的药效学、药代动力学、分子药理学和制剂学等方面进行进一步的研究工作[5]。

本试验结果表明,不同采收期芒果叶中黄酮的含量有差别,其中以1月、11月份总黄酮含量较高,5~7月含量最低。故在进行芒果叶中黄酮成分的研究时应注意采收期的影响。

[参考文献]

[1] 广西壮族自治区卫生厅. 广西中药材标准[M]. 南宁:广西科学技术出版社,1992:54.

[2] 邓家刚,曾春晖. 芒果叶及芒果苷30年研究概况[J]. 广西中医学院学报,2003,6(2):44-49.

[3] 张小坡,裴月湖,刘明生,等. 海芒果叶中黄酮类成分的研究[J]. 世界科学技术(中医药现代化),2010,12(3):423-425.

[4] 汪敏,王维民,陈良. 金黄芒果废弃物中总类黄酮含量的测定[J]. 农产品加工·学刊,2006,85(12):42-44.

[5] 黄锁义,黎海妮,唐玉莲,等. 超声波提取芒果叶总黄酮[J]. 中国现代应用药学,2006,23(6):455-456.

[6] 彭新生,周艳芳,王孔治,等. 正交试验法优选仙鱼汤的提取工艺研究[J]. 广东医学院学报,2008,26(2):126-128.

[7] 汪敏,王维民,谌素华. 芒果皮黄酮的免疫调节作用[J]. 食品研究与开发,2010,31(8):23-25.

[8] 文良娟,刘昊,王维. 不同品种芒果总黄酮的抗氧化活性[J]. 食品科学,2011,32(19):79-82.

[9] 王晓波,刘冬英,邹志辉,等. 芒果叶总黄酮抗氧化作用研究[OL]. .

(收稿日期:2012-11-30 本文编辑:袁 成)

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