不同剂量电离辐射对大肠癌HCT-8细胞凋亡的影响

时间:2022-08-23 04:19:13

不同剂量电离辐射对大肠癌HCT-8细胞凋亡的影响

摘要: 目的:本研究通过检测不同剂量电离辐射大肠癌细胞凋亡的影响,探讨逆转肿瘤多 药耐药的方法。方法:采用流式细胞术检测大肠癌多药耐药hct-8细胞凋亡的变化。结果: 与假照射组相比,2Gy大剂量照射后HCT-8细胞凋亡小体百分率明显增加(P

关键词:辐射;大肠癌;多药耐药;细胞凋亡

中图分类号: R735.3+4 文献标识码: B 文章编号: 1008-2409(2008)05-0921-03

大肠癌是常见的消化道恶性肿瘤,治疗以手术为主,但是大肠癌又是一种全身性疾病, 对于手术后及失去手术机会或转移性大肠癌患者均应该应用化疗、放疗等综合治疗,以提高 患者生存质量,降低复发率,延长患者生存期,提高治愈率[1]。但化疗的最大障 碍是肿瘤 细胞的多药耐药性,特别是大肠癌细胞的多药耐药(MDR)原发性高表达及继发性高表达,使 得大肠癌细胞的多药耐药性明显高于其它肿瘤,使化疗的效果明显低于其它肿瘤。本研究通 过检测不同剂量电离辐射对大肠癌多药耐药细胞凋亡的影响,探讨逆转肿瘤多药耐药的方法 。

1 材料与方法

1.1 细胞株

人大肠癌HCT-8细胞株,由卫生部放射生物重点实验室提供。细胞培养在 含10%小牛血清的RPMI1640培养液内,置37℃、5%CO2培养箱内饱和湿度培 养,0.25%胰蛋白酶消化传代。

1.2 照射条件

用国产X.S.S.250(FZ)型固定式X射线 深部治疗机照射,电压200kV,电流10mA,滤板0.5mmCu+1.0mmAl。低剂量(0.05~ 0.2Gy)全身照射,靶皮距247.3cm,剂量率0.0125Gy/min。较高剂量(2Gy)全身照 射,靶皮距56cm,剂量率0.287Gy/min。

1.3 细胞耐药模型的制备

取处于对数生长期 细胞,在无菌条件下操作。分别以35、350和 3500μg/L阿霉素(ADM)孵育3d,而 后恢复 3d,镜下观察细胞形态及数量,发现350μg/L组细胞数量适中形态完好,故以400 μg/L ADM作为HCT-8细胞耐药模型刺激浓度。取处于对数生长期细胞,在无菌条 件下操作。首先以 50μg/L ADM孵育3d,而后恢复3d,倍量(100μg/L)孵育3d,再次恢复3d ,如此反复至 浓度增至400μg/L,收取细胞待用。同时设空白对照(不加药物刺激)及一直用同 一剂量刺激组做平行对照。

1.4 照射模型的制备

将耐药细胞分为以下5组:A:假照射组;B: 大剂量组(2Gy); C:0.05Gy+2Gy组(先给予0.05Gy低剂量照射后再给予2Gy大剂量照射,以下同);D:0.1Gy+2Gy组;E:0.2Gy+2Gy。大、小剂量间隔4h 照射,大剂量照射后24h收取细胞待测。每组设重复样品 4个。

1.5 流式细胞术(FCM)检测大肠癌细胞凋亡

本实验采用美国B-D公司生产的FACScan流式细胞仪,激发光源为15mW氩离 子激光,波长 488nm,应用间接免疫荧光,FCM检测。将HCT-8单细胞悬液,PBS洗2次,弃 上 清,吸取细胞,注入到75%冷乙醇中固定,4℃放置过夜。从75%冷乙醇固定的HCT-8单细 胞 悬液中取1×106个细胞,PBS洗涤2次,加RNase(0.1mg/ml)100μl,37℃反应30min,P BS洗 2次,加PI(0.05mg/ml,含0.03%Triton X-100)0.5ml,4℃避光反应30min,进行FCM 检 测。凋亡小体变化数据用Lysis软件分析。每组均重复3次(n=3)。

1.6 统计学方法

研究结果以平均值±标准差 (±s)表示,两两比较采用t 检验。

2 结果

对HCT-8细胞照射,大、小剂量间隔4h照射,大剂量照射后24h收取细胞待测。将HCT -8 细胞用75%乙醇固定,采用流式细胞术(FCM)分析细胞凋亡小体百分率的变化。由表1可见 , 与假照射组相比,2Gy大剂量照射后HCT-8细胞凋亡小体百分率明显增加(P

3 讨论

大肠癌是常见的消化道恶性肿瘤,我国大肠癌发病率有上升趋势。大肠癌治疗以手术为 主,但是大肠癌又是一种全身性疾病,虽然肿瘤被完全切除,但当原发肿瘤出现明显症状之 前可能已发生播散性转移。对于手术后及失去手术机会或转移性大肠癌患者均应应用化 疗 、放疗等综合治疗,以提高患者生存质量,降低复发率,延长患者生存期,提高治愈率。但 化疗的最大障碍是肿瘤细胞的多药耐药性,多药耐药(MDR)在人类肿瘤化疗过程中普遍存在 ,产生MDR的一个重要机制是MDR基因MDR1过度表达。特别是大肠癌细胞的MDR1原发性高表达 及继发性高表达,使得大肠癌细胞的多药耐药性明显高于其它肿瘤,使化疗的效果明显低于 其它肿瘤。

细胞凋亡是主动的、程序化的固有细胞死亡过程。细胞凋亡是许多抗肿瘤药物及放疗发 挥作用的重要环节[2]。流式细胞仪观察法是检测细胞凋亡的常用方法。本实验是 通过流式 细胞仪观察 X射线对大肠癌HCT-8细胞凋亡的影响,与假照射组相比,2Gy大剂量照射后HCT -8 细胞凋亡小体百分率明显增加(P

参考文献:

[1] 李啸峰,张矛,马琳,等.54例直肠癌术后复发因素分析[J].实用肿瘤学杂志,1995,10(4):61-62.

[2] ZHANG C,LUNDGREN K,YAN Z,et al.Pharmacologic properties of AG-012986, a pan-cyclin-dependent

kinase inhibitor with antitumor efficacy [J]. Mol Cancer Ther,2007,(4):818-828.

[3] ZECCHIN K G,SEIDINGER A L,CHIARATTI M R,et al.High Bcl-2/Bax ratio in Walker tumor cells protects mitochondria but does not prevent H202-induced apoptosis via calcineurin pathways[J]. J Bioenerg Biomembr, 2007,39(2):186-194.

[4] NIJHUIS E H,POOT A A,FEIJEN J,et al.Hsp70 and p53-reponses after heat treatment and/or X-irradiation mediate the susceptibility of hematopoietic cells to undergo apoptosis[J]. Int J Radiat Biol,2008,84(2):99-105.

(收稿日期: 2008-05-20)

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