月经周期范文
时间：2023-03-21 11:31:04
月经周期范文第1篇
月经病主要是指月经在周期、经量、经色、经质等方面的异常改变。临床常见的月经病有月经不调、闭经、痛经、崩漏等。月经不调表现为周期不准或经量异常,而周期不准包括经行先期、经行后期和经行先后无定期。
经行先期是指月经周期提前七天以上,甚至一月两潮的患者。造成经行先期的原因有两种,一种是血热,一种是气虚。血热多见于年纪较轻的妇女,这些人平素过食辛烈助阳的食物,或情志抑郁积而化火都可导致血溢于脉外,造成热迫血行、经血先期而下。治疗应解郁散热,可服加味逍遥丸。方中选用舒肝解郁、调达肝气的药物,可使患者心情舒畅,诸症自消。气虚多见于年纪稍长的妇女,患者平日饮食失节、劳倦过度损伤了脾胃,造成气虚导致经期提前。治疗主要是补气摄血,可服人参归脾丸。方中以人参、当归、黄芪补气生血,再辅以一定的养心安神药,对于脾虚血少的经行前期症疗效明显。
经行后期是指月经周期延后七天以上,甚至每隔四五十天一至的患者。造成月经后期的原因大致有三种:一是血寒,二是血虚,三是气滞。血为液体,遇寒则凝。若妇女感受寒凉,尤其是行经期间赤脚涉水很容易造成血寒,推迟经期。治疗应温经散寒,可服艾附暖宫丸。方中遣用大量艾叶炭、吴茱萸暖宫散寒,配合理气止痛的香附,全方具有暖宫调经之功,对于血寒的患者十分对症。中医认为,气行血则行、气滞血则滞,因此,血虚也就不能使月经如期而至,治疗一般是补血养血,可服用人参养荣丸。方中以人参、黄芪、当归等药补气补血,兼以五味子宁心安神、陈皮健脾理气,全方补而不滞,达到了气生血长的目的。至于气滞而造成的经行后期,主要是因为精神长久抑郁不舒而导致血流不畅,治疗当用开郁行气活血之法,可服七制香附丸。方中以香附开郁顺气,配以一定的理气活血药,如元胡、益母草等,此药专治气滞造成的经行后期及疼痛症状。
经行先后无定期是指月经不按周期来潮或先或后的患者。这种病的发生原因有两个,一是肝郁,二是肾虚。治疗肝郁造成的经行不定期宜舒肝健脾,养血调经,服药应选用逍遥散。治疗肾虚造成的经行不定期应专补肾气,可选服坤顺丸。
“经调则百病不生”,治疗时要认真辨别此病的标本关系,属于原发性的应先调经,属于继发性的则应先治疗其他疾病,病去则经自调。
月经周期范文第2篇
报道说，22岁的法学院学生安妮有一个秘密，为了参加期末考试、一场婚礼或几次特殊的活动，她通过服用避孕药避过了几次月经。过去一年来，她只经历了9次月经而不是正常的13次。
东弗吉尼亚医学院的研究人员正在检验一种新的避孕药物：Seasonale，这种药物能把女性的月经周期减至每年4次。如果得到食品和药物管理局的批准，这种新的避孕药物有望在2003年摆上美国药店的货架。
像普通避孕药一样，Seasonale含有两种不同的激素：孕激素（抑制卵巢释放卵子）和雌激素（使子宫内膜不致脱落）。具体做法是：每天服用Seasonale，连续服药12周，下一周则服用无效剂，使体内激素水平在短期内发生变化，子宫排出不成熟的卵子，出血也不太多。
每年只来4次月经也许并不像听起来那么奇怪。研究发现，从历史角度看，非洲和澳洲妇女在成年后的大部分时间里不是怀孕就是在哺乳，因此，她们一生中平均只来150次月经；而如今发达国家的妇女一生平均要来400次月经。其实，月经次数越多，越容易患像子宫内膜炎这类疾病。
但是，服用雌激素会增加妇女患血栓或中风的可能性。雌激素还可能提高患乳腺癌的危险，但关于这方面的证据还不太明确。
还有一个避免月经的办法：每3个月注射一针醋甲孕酮，这种药物只含孕激素，不含雌激素。大部分使用这一避孕手段的妇女最终都停止了月经。当然，她们每年得去4次医院。
与此同时，人们还在研究更新、更好的办法。比如，美国加州巴兰斯制药公司的研究人员正在开发一种能降低体内生殖激素的避孕药，其目的是降低与激素有关的癌症的危险性，把痛经、肿胀等月经引起的症状减至最低。
如果你决定调整月经周期，不妨先咨询一下医生，因为有很多不同的避孕药可供选择。另外，关注服药期间的副作用也是必需的。月经周期也许有不受欢迎的趋势，但它们目前还没有退出历史舞台。
月经周期范文第3篇
月经，一般每个月都会来一次。女人的一生中，从青春期到绝经期，有大半时间是和月经相伴相行的。那么，月经究竟是什么呢？从专业角度来说，月经是伴随卵巢激素周期性变化而出现的子宫内膜周期性脱落及出血。人生第一次来月经（月经初潮）多在13～14岁，初潮的早晚主要受遗传控制，但也受营养、体重等因素的影响。近年来，月经初潮年龄有提前的趋势。
正常月经是具有周期性的。出血的第1日为月经周期的开始，从一次月经的开始第一天到下次月经的前一天，称为一个月经周期，一般为28±7天（21～35天），平均28天。每次月经持续的时间称经期，一般为3～7天。经量为一次月经总的失血量，正常月经量为5～80毫升，超过80毫升为月经过多。规律月经的指标至少包含4个因素：周期频率、周期规律性、经期长度、经期出血量。
月经情况是因人而异的，在判断月经是否正常时，应该考虑自身的规律，在符合长期规律性的基础上，允许个体之间有差异。举个例子，有的人长期月经周期是25天，有的人长期月经周期是30天，这两个人的月经周期都是正常的。
解密排卵：一生排卵数400～500个
前面提到，月经是卵巢激素周期性变化的结果。而卵巢激素的周期性变化，与排卵是息息相关的。根据排卵情况，月经周期分为四个阶段：卵泡期、排卵期、黄体期、月经期。简单地说，卵泡期就是排卵前的准备过程，卵泡逐渐长大，分泌雌激素；然后就是一瞬间的排卵；黄体期（一般14天）是排卵后的过程，排卵以后的卵泡腔形成黄体，黄体产生雌激素和孕激素；如果女性排卵后14天内没有受孕，黄体就会萎缩，雌、孕激素就会很快下降，那么原本为受孕准备的子宫内膜就会发生脱落，形成月经，这就是月经期。然后又周而复始。
女性的生育期，卵巢生殖功能最旺盛，一般从18岁左右开始，历时大约30年。女性卵巢里面的卵泡数量在出生时就已经确定，以后只会减少不会增加，在月经初潮的时候大约有十万以上的卵泡库存。生育期女性，每个月会有一批卵泡发育，经过三个月以上的募集和选择，其中一般只有一个优势卵泡可达到完全成熟，并排出卵子。其余的卵泡发育到一定程度通过细胞凋亡机制自行退化，称卵泡闭锁。女性一生中只有400～500个卵泡发育成熟并排卵。
解密绝经：绝经年龄主要取决于遗传
很多人不禁产生疑问：既然女人一生的排卵数量是一定的，每个月经周期排一个，如果月经周期短，是否就会更早用完储备进入绝经期，从而老得快？而如果月经周期长，是否就老得慢？
回答这个问题，首先，我们必须了解正常的卵巢衰老。
卵巢衰老是一个多因素相互作用、逐渐累积的复杂过程。衰老过程从围绝经期开始，一般始于40岁，历时短至1～2年，长至10～20年，此期的卵巢功能逐渐开始衰退，卵泡数明显减少且容易发生卵泡发育不全，因而月经常常常变得不规律。最终，由于卵巢内卵泡耗竭或剩余的卵泡对于垂体促性腺激素丧失反应，导致卵巢功能衰竭。
而月经的永久性停止，我们称之为绝经。我国妇女的平均绝经年龄为49.5岁，80%在44～54岁。尽管现在人均寿命已经明显延长，但绝经年龄却变化不大，这说明绝经的年龄主要取决于遗传。
衰老，与月经周期有关吗？
“月经周期短的女人老得快”的理论看似正确，它基于一个基本条件：女人一生中排出的卵子数目是恒定的。这句话纵然不错，但其实，在卵巢中存在着大量的始基卵泡，这些始基卵泡就像卵子储备力量。前面已提到，生育期的女性，每个月经周期排一颗卵，但每个周期实际被招募的是一批卵泡，这些被招募的卵泡当中，最终只有一个发展为优势卵泡并排卵，其余卵泡都闭锁退化了。因此，虽然女性一生中排出四百多颗卵子，但是，这只占卵巢总始基卵泡数目的 0.1%。而每个月，不管最终是否有一个卵排出来，都会有那么一批卵从库存中被动员出来，开始发育；而且，不管其中有没有一个卵最终排出来，这一批卵都会自行退化。也就是说，无论什么样的情况，排卵还是不排卵，卵巢里面卵的消耗速度是恒定的。
月经周期中，黄体期通常是固定的14 天。而卵泡期因人而异，变化较大。如果你的月经周期比别人稍微短那么几天，大可不必担心自己会因此而出现卵细胞耗竭、卵巢早衰。月经周期短，只是说明卵泡成熟得更快一些，说明你一生中可能比别人多排几十颗卵，但并不会导致卵子提前耗竭，因为卵巢有很强大的储备力量。虽然说每个女性卵子数从出生开始就是恒定的，一生排的卵一般也就四百来个，但并不代表排卵数是完完全全相同的，这之间还是有数量差异的。
人为延长月经周期，可取吗？
卵巢的衰老大部分是由遗传决定的，与排卵并没有明确关系。举个例子：一生服用避孕药抑制排卵的女性，并无数据显示会因此而延缓衰老。
月经周期的长短主要是由卵泡发育成熟的周期决定的。卵泡发育慢，月经周期长；相反，卵泡发育速度快，月经周期短。
如果长期规律性地月经周期短，完全没有必要人为使用激素延长月经周期。因为月经周期短，并不会造成卵巢早衰。
如果月经周期突然变长或变短，需要引起警惕，考虑是否患有某些疾病，或是否因精神状态、环境改变以及药物、营养状况、妊娠等因素变化所致。
要想老得慢，应该怎么做？
从目前的科学发展来看，人的衰老是一个避无可避、逃无可逃的问题。只要是人，都会衰老。延缓衰老，我们能做到的事情归纳起来就是：心态好，注意养生，适当锻炼。
由于医疗技术的进步，人类寿命明显延长，一些地区平均寿命已达80多岁。这就意味着，女性一生中，绝经后的时间已占生命的三分之一甚至更多，卵巢的衰老相对就有点早，而绝经后性激素的改变（如雌激素的锐减）对全身各系统（如心脑血管系统、骨骼系统、神经系统等）都有巨大影响，大大影响女性老年阶段的健康。因此近年来，围绝经期激素补充治疗渐渐受到重视。绝经早期有症状的中年妇女（一般为绝经10年之内或60岁以前），进行激素补充治疗可以很好地缓解绝经相关症状。当然，这需要在妇科专业医生的指导下进行。
月经周期范文第4篇
每月一次的例假令不少女性烦恼，但同时不少女性会利用月经周期来调理身体健康。那么，在28天的月经周期应该如何做才能达到保养身体的效果呢？
月经第1-7天
第1天：小心偏头痛
随着月经的开始，偏头痛的折磨也由此开始。女性的神经通常在此时变得十分敏感，在感觉头疼欲来的时候，就应独自在幽暗而安静的卧室内静卧，这样能减缓偏头痛的发作症状。
第2天：睡得像个孩子
月经的第二天，下身的血流最为畅通，这可是一个治疗念珠菌性阴道炎的好时机，因为这时用药最有效。另外，此时人体所生产的褪黑激素比以往任何时候都多，你会在这一天安然进入梦乡。
第3天：巧补维生素
这一天，你应该特别注重饮食营养，多吃含维生素丰富的食品。此外，还可服用一些维生素的补充剂，会对预防感冒起到事半功倍的作用。
第4天：减肥最当时
此时，你的身体正在努力排除经前由于激素水平过高而引起的积水，这时你会欣喜地发现，没有刻意减肥，体重却略微下降。
第5天：美发和美肤
由于雌激素水平很低，会使头发失去光泽、面色苍白，这一天美容、美发是首要任务。
第6天：排除废料
此时新陈代谢全速运行，是排除体内废料和有害物质的最理想时机。因此你每天要至少饮两升水。
第7天：饮出健康
月经将近结束的时候，对血管和心脏具有保护作用的雌激素水平慢慢开始上升。每天临睡前喝上一小杯红葡萄酒，会帮助雌激素更好地保护心血管。
月经第8～14天
第8天：补养神经
此时最容易出现神经过敏和情绪的波动，最惬意也最有效的方法就是给自己做一个舒缓神经的水疗。
第9天：状态特别好
雌激素水平继续上升，你会发现此时此刻你的头发和肌肤的状态特别好。
第10天：看牙医的日子
随着免疫系统越来越好地进行运作，因感染患病的可能降至最低，而且与此怕痛的感觉明显减少。这一天是看牙医和治疗牙病的最佳日期。
第11天：工作强者
现在正是28天中感觉最好的时候，肌肤状况良好、身心平衡、情绪格外好，理解力也特别强。现在是你面试和谈判的最好时机。
第12天：尽情
这是拍乳腺X线照片的最理想日期，此时胸部组织十分柔软，因而X线透视效果特别好。此时你的会变得强烈，因为排卵期日益临近。
第13天：别忘避孕
现在身体只想一件事：怀孕。而你可能只想着另外一件事：避孕。不想当妈妈，那么在第17天之前就别忘了准备好各种避孕工具。
第14天：嗅觉灵敏
现在你的嗅觉特别灵敏，对任何女性来说，这正是为自己寻找一种新香水的最好时机。
月经第15～21天
第15天：抑制食欲
排卵后胃口大开是完全正常的现象，身体储存能量，为可能的受孕做好准备。最好的对策是多吃水果和喝茶，它们都能很好地抑制食欲。
第16天：脂肪燃烧最快
排卵后，假若受孕不成功，身体开始为下一次的行经期慢慢做准备。雌激素水平猛烈下降，这些变化，会促进脂肪燃烧，此刻多吃水果和多运动，就能多减掉几千克体重。
第17天：预防水肿
从今天开始，身体的轻觉会越来越少，减肥的成果也开始消失，这都是因为在身体中有很多积水产生。预防的方法有很多，如最好低盐饮食、多喝一些薏米仁水。
第18天：促进肠蠕动
这一天，肠道容易产生惰性，从而导致便秘。为预防便秘，应多吃能促进肠蠕动的高纤维食物，如土豆、豆类、核桃、绿叶蔬菜。
第19天：不宜看牙病
现在的身体变得十分敏感，包括口腔，这可能是孕酮所引起的。刷牙太猛会引起牙龈病，这时不宜去看牙医。
第20天：草药营造好情绪
许多女性在此时会感到做事没动力，懒散加重。倘若此时的你很容易神经敏感和易激动，金丝桃茶则能使你快速恢复冷静沉着的心态。
第21天：小心痘痘
皮脂腺全速运行，因而会让你的痘痘如雨后春笋般迅猛生长。
月经第22～28天
第22天：增添能量
由于激素的作用，身体的代谢功能在此时很强，能充分利用身体中的养分，使你的身体获得更为充足的能量。
第23天：享受阳光
尽可能多地享受日光的照射，并经常去空气新鲜的地方活动，会使你的精神放松，而且对于心态的平衡也有很好的作用。
第24天：补充维生素B6
月经前的痛苦日益临近，许多女性感到胸部慢慢肿胀，肚子也鼓了起来，这通常是所谓的经前紧张综合征。维生素B6被称为神经维生素，能消除胸口胀痛。
第25天：回归自我
行经前的几天虽然工作效率不高，但敏感性却上升。由于对工作付诸行动的紧迫感下降，也就能赢得时间回到自我，提高生活质量。
第26天：松弛再松弛
经前紧张综合征在此时厉害起来，甚至可能导致抑郁、恶心、头晕等症状。音乐、冥想和呼吸练习有助于消除上述症状。
第27天：肌肤爱湿润
肌肤现在对外界影响反应敏感，极易发红和干燥。因此需采用更加水润的护肤品。
第28天：烟酒害处大
月经周期范文第5篇
【关键词】卵巢癌 月经周期
中图分类号：R737.31文献标识码：B文章编号：1005-0515（2011）12-080-01
至目前，卵巢癌的确切病因尚未完全明确，但经过学者们不断努力已得知许多导致卵巢癌的高危因素，本文仅从月经周期这单一因素探讨其与卵巢癌发生之间关系，并为卵巢癌预防提供可能的依据。有关月经周期与卵巢癌发生之间关系的研究尚未见国内为相关报道。
1 对象与方法
病例选自2000年至2010年大连市妇产医院手术病理确诊为卵巢癌的患者480例，排除年龄＜20岁及＞60岁的可能对月经周期描述不准确的研究对象，记录其月经周期天数，进行统计学分析，并与正常月经周期天数进行比较。
2 结果
结果显示，卵巢癌患者的平均月经周期天数为27.0天，月经周期天数正常月经周期天数（28-30）的卵巢癌患者占总患者数的95%。仅就月经周期这单一因素来说，月经周期短月经频繁的女性较月经周期长的女性患卵巢癌的几率高。见表1和表2。
表1 卵巢癌患者月经周期天数情况
表2 卵巢癌患者不同月经周期例数及百分比情况
3 讨论
卵巢癌的发生为40-79岁，其发病率由15.7/10万增加到50.0/10万[1]。它作为一个“沉默的杀手”严重威胁着妇女的健康与生命。卵巢深在盆腔，发病隐匿，除在体检中可发现部分早期卵巢癌预后较好外，一般出现症状或体征的卵巢癌多为晚期，尽管可通过减瘤术或系统化疗进行被动的治疗，但其预后极差，其5年生存率仍在50%以下。因此在临床工作中我们应力求从卵巢癌病因出发，预防或减少卵巢癌的发生至关重要。
卵巢癌的病因尚未完全明确，它的发生应该是多因素交互作用的结果，至目前为止，经过全世界专家学者的不懈努力，已总结出不少卵巢癌发病之高危因素，主要集中在以下7种：①遗传家族史，②BRCA1与BRCA2基因突变，③内分泌紊乱、不孕症，早发月经及延迟绝经者，④促排卵药物，⑤激素替代疗法，⑥滑石粉，⑦不合理的饮食结构[2]。本文仅从第3个高危因素，即月经方面入手，探讨以往学者未曾涉及的月经周期这一因素与卵巢癌发生之间的关系，努力为我们妇产科临床工作找出一个现实可行的预防卵巢癌发生的方法。从卵巢癌的发生角度讲，存在几种不同的模式，其中一种模式为卵巢表面上皮和皮质包涵囊肿模式
（OSE―CICs模式），在排卵时，卵泡破裂卵细胞释放造成了卵巢表面的损伤，因此卵巢表面上皮（OSE）需修复这个破裂口。生育年龄的妇女，损伤-修复的过程不断重复，OSE细胞使排卵相关炎症细胞因子和活性氧破坏DNA。DNA损伤增加了细胞转化的敏感性[3]。随着妇女年龄的变化，卵巢表面出现许多进入皮层间质的内陷。这些内陷不断修剪最终彻底进入间质，形成皮质包涵囊肿（CICs)。数种有促进生长功能的激素作用于卵巢(例如促性腺激素、雌激素和雄激素)，诱导了CICs的上皮细胞增生。而此时如果有一些上皮细胞恰好隐匿有未修复的DNA损伤，就会成为瘤变的最佳目标，最终发生卵巢癌[4]。基于上述理论，故本文从月经周期出发，探讨月经周期缩短，月经频繁可能造成卵巢损伤-修复次数增多，损伤-修复次数越多发生错误修复的几率就会越大，最终导致卵巢癌发生的可能性就会增加。
上述模式与已明确的流行病学数据结果相一致。排卵周期的减少是最重要的减女罹患卵巢癌危险的因素[5]。一些研究已经证明，口服避孕药可以有效的保护卵巢，可使卵巢癌发生的危险性下40%-50%[6]，并且随着服药时间延长，危险性降低更明显。服用1年的危险性下降10%-20%，而服用5年以上者危险性则下降约50%。本文中探讨的月经周期情况在临床工作中很容易获得，对于其中周期短，月经频繁的生育期妇女，实行口服避孕药物的预防措施，即可有效预防这一部分因素引起的卵巢癌的发生，不失为一种现实可行有效的好方法。
本文提出的月经周期这一卵巢癌相关因素，仅为作者本人查找相关资料所得出之结果，还有待于广大学者进一步研究证实。
参考文献
[1] Partridge EE, Barnes MN. Epithelial ovarian cancer: prevention, diagnosis, and treatment. CA Cancer J Clin, 1999,49(5):297.
[2] 高永良. 卵巢癌的高危因素与预防. 中国实用妇科与产科杂志，200l，17(11)：654-655．
[3] Bankhead CR，Collins C，Stokes―Lampard H。el a1．Identifying symptoms of ovarian cxineeHu qualitative and quantita tive study [J]．BJOG，2008，1 15(8)：1008―1014．
[4] Wong AS．Leung PC．Role of endocrine and growth faelors on the ovarian surface epithelium [J]．J Obsmt Gynaecol Res，2007，33(1)：3-16．
[5] Permuth―Wey J，Sellers TA．Epidemiology of ovarian cancer[J]．Methods MoI Biol，2009，472：413-437．
月经周期范文第6篇
【关键词】插管法；喉镜检查；咽炎；月经周期
【中图分类号】R614.2 【文献标识码】B【文章编号】1004-4949（2014）01-0295-01
全身麻醉中通常使用直接喉镜辅助气管插管1-3。为了让声门的视野更清晰，在使用喉镜和插管时会施加一些外力。故而常常会损伤到唇、齿、咽、会厌、喉、声带、气管等部位，从而使得患病率升高，甚至致死。全身麻醉患者气管插管术后最常见的并发症之一为咽痛。有报道大约有40%的患者主诉有咽部不适3-14。不同研究中报道的术后咽痛大约为18%-65%6，15-20。尽管喉部不适并非严重并发症，但是给患者带来了负面的影响6。有报道的引起咽痛的危险因素有女性患者3，7-9，21-23，术后恶心呕吐，吸烟史，插管次数6，9，拔管时间，咳嗽频率等。此外术中患者，置管或术中导管移位会直接导致组织损伤。在女性的月经周期中，激素水平也不断的产生变化。这些变化会导致女性的生活质量发生改变，如情绪的波动，我们称为经前期综合症。然而，这种变化会影响痛觉阈值。有报道，在黄体期，对痛觉的敏感性是增加的24。而且不同女性对镇痛剂的反应各不相同，并且比男性所需的剂量相对要高些24-31。
激素水平的变化对临床影响的大小及效应仍不清楚。它对痛觉的感受性是随时间而变化的，因而，时间是个重要的变量32，33。本研究旨在探讨月经周期与咽喉痛的关系。
1 资料与方法
1.1一般资料 46例非孕且准备实施全身麻醉手术的女性患者，年龄18-45岁，临床检查无气道病变。排除以下情况：近期肺部疾病，吸烟，术前两周有感冒史，可摘义齿，面部、颈部、口腔和或气道先天或后天畸形，口疮或溃疡，胸颈部手术后，术程超过3小时，怀孕，口服避孕药，月经不调。
1.2方法
1.2.1分组 根据时间分为三组：术后1小时，术后6小时，术后24小时。
1.2.2数据收集 所有入选对象均记录末次月经，分别于术后1小时、6小时及24小时记录咽痛、吞咽困难、声嘶的严重程度（分为无、轻、重）。
1.2.3 统计学分析 运用SPSS16.0软件包建立数据库，并用卡方及t检验进行统计学分析，P
2结果
3讨论
根据本文的研究，月经周期中激素的变化与咽痛并无相关性。拔管后的第6个小时，51%的患者出现疼痛，这与以往的资料报道是相符的3-14。有趣的是月经周期的第6或第7天的患者占更多数，可能原因是此期间患者未来月经，更方便手术，但是这与咽痛的发生率无相关性。
拔管后第一个6小时咽痛的发生率是影响患者预后的因素之一。因为像心率、血压、出血、止痛药的应用及副作用（恶心、呼吸暂停）是随着疼痛的程度而变化的。因而我们建议，提高插管技术，拔管时更小心些能够减少咽痛的发生，从而提高患者生存质量，同时降低了并发症的发生。
参考文献
[1]Levitan RM， Heitz JW， Sweeney M， Cooper RM. The complexities of tracheal intubation with direct laryngoscopy and alternative intubation devices. Ann Emerg Med. 2011；57（3）：2407. doi： 10.1016/j.annemergmed.2010.05.035.
[2]Savoldelli GL， Schiffer E， Abegg C， Baeriswyl V， Clergue F， Waeber JL. Comparison of the Glidescope， the McGrath， the Airtraq and the Macintosh laryngoscopes in simulated difficult airways*. naesthesia. 2008；63（12）：135864. doi： 10.1111/j.1365-2044.2008.05653.x.
[3]Stout DM， Bishop MJ， Dwersteg JF， Cullen BF. Correlation of endotracheal tube size with sore throat and hoarseness following general anesthesia. Anesthesiology. 1987；67（3）：41921.
[4]Ayoub CM， Ghobashy A， Koch ME， McGrimley L， Pascale V， Qadir S， et al. Widespread application of topical steroids to decrease sore throat， hoarseness， and cough after tracheal intubation. Anesth Analg. 1998；87（3）：7146.
[5]Bennett MH， Isert PR， Cumming RG. Postoperative sore throat and hoarseness following tracheal intubation using air or saline to inflate the cuff--a randomized controlled trial. Anaesth Intensive Care. 2000；28（4）：40813.
[6] Biro P， Seifert B， Pasch T. Complaints of sore throat after tracheal intubation： a prospective evaluation. Eur J Anaesthesiol. 2005；22（4）：30711.
[7]Christensen AM， Willemoes-Larsen H， Lundby L， Jakobsen KB. Postoperative throat complaints after tracheal intubation. Br J Anaesth. 1994；73（6）：7867.
[8]Hahnel J， Treiber H， Konrad F， Eifert B， Hahn R， Maier B， et al.[A comparison of different endotracheal tubes. Tracheal cuff seal， peak centering and the incidence of postoperative sore throat]. Anaesthesist. 1993；42（4）：2327.
[9] Kloub R. Sore throat following tracheal intubation. Middle East journal of anesthesiology. 2001；16（1）：29.
[10] Mandoe H， Nikolajsen L， Lintrup U， Jepsen D， Molgaard J. Sore throat after endotracheal intubation. Anesth Analg. 1992；74（6）：897900.
[11]Navarro RM， Baughman VL. Lidocaine in the endotracheal tube cuff reduces postoperative sore throat. J Clin Anesth. 1997；9（5）：3947.
[12]Rieger A， Brunne B， Hass I， Brummer G， Spies C， Striebel HW， et al. Laryngo-pharyngeal complaints following laryngeal mask airway and endotracheal intubation. J Clin Anesth. 1997；9（1）：427. doi： 10.1016/S0952-8180（96）00209-7.
[13]Stratelak PA， White W， Wenzel D. The effect of glycopyrrolate premedication on postoperative sore throat. AANA J. 1996；64（6）：5458.
[14]Jones MW， Catling S， Evans E， Green DH， Green JR. Hoarseness after tracheal intubation. Anaesthesia. 1992；47（3）：2136.
[15]Barkhordari K， Etezadi F， Shariat Moharari R， Khajavi MR. Comparison of postoperative sore throat following laryngoscopy conducted by Miller and Macintosh laryngoscope blades. Health. 2011；3（10）：623625.
[16]Capan LM， Bruce DL， Patel KP， Turndorf H. Succinylcholine-induced postoperative sore throat. Anesthesiology. 1983；59（3）：2026.
[17]Jones PM， Armstrong KP， Armstrong PM， Cherry RA， Harle CC， Hoogstra J， et al. A comparison of glidescope videolaryngoscopy to direct laryngoscopy for nasotracheal intubation. Anesth Analg. 2008；107（1）：1448. doi： 10.1213/ane.0b013e31816d15c9.
[18]Lange M， Frommer M， Redel A， Trautner H， Hampel J， Kranke P， et al. Comparison of the Glidescope and Airtraq optical laryngoscopes in patients undergoing direct microlaryngoscopy. Anaesthesia. 2009；64（3）：3238. doi： 10.1111/j.1365-2044.2008.05781.x.
[19]Maruyama K， Sakai H， Miyazawa H， Iijima K， Toda N， Kawahara S， et al. Laryngotracheal application of lidocaine spray increases the incidence of postoperative sore throat after total intravenous anesthesia. J Anesth. 2004；18（4）：23740. doi： 10.1007/s00540-004-0264-2.
[20]Teoh WH， Shah MK， Sia AT. Randomised comparison of Pentax AirwayScope and Glidescope for tracheal intubation in patients with normal airway anatomy. Anaesthesia. 2009；64（10）：11259. doi： 10.1111/j.1365-2044.2009.06032.x.
[21]Higgins PP， Chung F， Mezei G. Postoperative sore throat after ambulatory surgery. Br J Anaesth. 2002；88（4）：5824.
[22]Jensen PJ， Hommelgaard P， Sondergaard P， Eriksen S. Sore throat after operation： influence of tracheal intubation， intracuff pressure and type of cuff. Br J Anaesth. 1982；54（4）：4537.
[23]Myles PS， Hunt JO， Moloney JT. Postoperative 'minor' complications. Comparison between men and women. Anaesthesia. 1997；52（4）：3006.
[24]Riley JL， 3rd， Robinson ME， Wise EA， Price DD. A meta-analytic review of pain perception across the menstrual cycle. Pain. 1999；81（3）：22535.
[25]Dahan A， Sarton E， Teppema L， Olievier C. Sex-related differences in the influence ofon ventilatory control in humans. Anesthesiology. 1998；88（4）：90313.
[26]Eisenach JC， DD H. Sex differences in analgesia from intrathecal neostigmine in humans. Anesthesiology. 1998；89（2）：1106.
[27]Froehlich F， Thorens J， Schwizer W， Preisig M， Kohler M， Hays RD， et al. Sedation and analgesia for colonoscopy： patient tolerance， pain， and cardiorespiratory parameters. Gastrointest Endosc. 1997；45（1）：19.
[28] Gear RW， Gordon NC， Heller PH， Paul S， Miaskowski C， Levine JD. Gender difference in analgesic response to the kappa-opioid pentazocine. Neurosci Lett. 1996；205（3）：2079.
[29]Gear RW， Miaskowski C， Gordon NC， Paul SM， Heller PH， Levine JD. Kappa-opioids produce significantly greater analgesia in women than in men. Nat Med. 1996；2（11）：124850.
[30]Gordon NC， Gear RW， Heller PH， Paul S， Miaskowski C， Levine JD. Enhancement ofanalgesia by the GABAB agonist baclofen. Neuroscience. 1995；69（2）：3459.
[31]Sarton E， Teppema L， Dahan A. Sex differences in morphine-induced ventilatory depression reside within the peripheral chemoreflex loop. Anesthesiology. 1999；90（5）：132938
[32]Fillingim RB， Ness TJ. Sex-related hormonal influences on pain and analgesic responses. Neurosci Biobehav Rev. 2000；24（4）：485501.
月经周期范文第7篇
马大夫：
我有个朋友，他患高血压病常服降压药，后来出现阳痿，几经周折才搞清是服药的副反应。我患脉管炎等多种慢性病，每天吃好几种药，我会不会出现上述这位朋友的反应呢？
西安李五天
李五天同志：
来信所问的事确实值得重视。随着医药学的发展，可供临床选择的用药越来越多，同时也陆续发现了许多副作用，影响和就是其中一项。仅可能造成阳痿的药物就达40多种。
药物引起障碍的机制很复杂，许多机制尚不明确。副作用因人、因时、因用药剂量而异，除去药物本身的因素外，还受吸收率、代谢率、排泄率、药物相互作用、身体素质等因素的影响。作为患者了解一些基本概念和必要的知识，有助于自己及时发现问题，及早向医生说明，为调整用药提供参考。
影响的药物包括下面几类：
一.激素类药物
1．雌激素：临床上常用它治良性前列腺增生症，不仅会造成逻辑性增生、胡须生长减少减慢，而且还会出现减退、阳痿、障碍、量减少等。
2．肾上腺皮质激素：这类药物如强的松、地塞米松等，应用广泛，但当每天用药量达20毫克时，即可出现障碍症状。
3．睾酮：它曾作为能"返老还童"的药风靡一时。有些阳痿患者打几针见效后，盲目滥用，结果病情非但不再好转，反而加重。这是为什么呢？原来，大量外来的睾酮抑制了垂体和的内分泌功能，使内源性的睾酮分泌减少。
二．利尿药：它使体内钾丢失，血钾浓度下降，神经肌肉敏感性降低，血管平滑肌松弛，可能导致功能减弱。
三．降压药：通过抑制脑和周围组织中的酶代谢及具有抗神经活性物质的作用，间接造成减低、阳痿、障碍等症状。
四．镇静药：安定等有松弛肌肉作用，通过脊髓传出神经可致减退和阳痿。
五．抗精神病药物：有些药使精囊括约肌麻痹，能力衰退；有些药可导致睾酮水平下降、生成障碍。
六．其他：如抗胃肠痉挛药、谷维素、洋地黄等对也有明显影响。
以上药物的副作用不应忽视，但也没有必要过分渲染，以至因噎废食。要分清主次，以免影响所患疾病的治疗。
人体气味影响月经周期
马大夫：
我是一个在外打工的公司职员，我们寝室有4位年轻的女性，有个疑问困惑我们很久了，又不知该问谁。那就是我们4个人的月经期怎么逐渐趋于同步了？这是为什么？
广州小梅
小梅：
你来信所问的同室女性月经周期同步化的问题，是一种正常的生理现象，是由人体气味引起的。说来似乎有点玄，怎么气味还能影响月经周期呢？
美国科学家曾做过这样的研究，在7名月经不规则的女受试者的鼻了下涂上男性腋窝下采集的汁液，3个月后她们的月经周期全部准确而有规律。可见来自人体的气味对月经周期确有影响。这种气味来自一种或数种分泌物，科学家把它叫作"外激素"。因为它的含量微乎其微，很难定性定量地进行研究。
在动物界的生殖活动中，气味常常扮演着特殊的角色。英国科学家曾从雌性恒河猴阴道分泌物中提取出一种称为"交媾素"的物质，它使雄猴"闻香"而来，而的雌猴不具备这种气味，便不能吸引雄猴的注意力。当科学家把这种提取物涂到的雌猴的性皮肤区，雄猴便会被吸引光顾。生活中也不难发现雄性动物嗅闻雌性动物的举动。
月经周期范文第8篇
[关键词] 腹部整形术；月经周期；性激素；围术期
[中图分类号] R62 [文献标识码] A [文章编号] 1673-7210（2013）05（a）-0058-03
外科手术出血是外科医生面临的主要挑战之一，是手术成功的关键，它直接影响患者的死亡率。减少术中及术后出血量可以减少术后并发症和缩短住院时间[1]。然而临床中，即使我们采用多种措施去预防及干预术中出血，但还是经常会遇见许多患者术中及术后不明原因的出血，大大延长了患者恢复的时间，术中及术后出血问题对于外科医生尚需进一步研究。许多研究已明确影响外科出血量的因素，同时一些技术被用来减少术中及术后出血，如术前局部注射血管收缩剂和低血压麻醉[2-3]，术后伤口处加压包扎及止血药的应用。现代研究表明，月经周期中性激素的变化可能对某些部位术中出血造成影响，如和鼻部整形术，因为这些部位对月经周期的变化比较敏感，组织和鼻部黏膜的变化跟月经周期中性激素的变化是密切相关的，对于这些部位，避开月经期手术是很有必要的[4]。但对于腹部整形手术，之前已经有研究证实，其对性激素的变化不敏感，月经周期的变化是否会影响其术中及术后出血，这是笔者此次研究的主要目的。
1 资料与方法
1.1 一般资料
选择河南科技大学第一附属医院显微外科2008年6月～2012年6月收治的腹部整形术患者42例，其中包括腹部瘢痕切除术、腹部黑色素痣切除术、腹部浅表肿瘤切除术及各种腹部畸形矫正术等，此研究得到所有患者的知情并同意，宫内膜活检可能更精确些，但是考虑到临床的可行性是不可取的。这些患者的月经周期通过下面的公式矫正为标准的28 d：矫正后的周期=[（14×手术时月经周期所处天数）/卵泡期天数（月经周期-14）]，根据这个公式，分为三组，每组各14例，A组（月经期，矫正后的月经周期1～7 d、21～28 d），B组（排卵期，矫正后的周期8～20 d），C组（绝经后女性）。排除标准：腹部手术或严重外伤史、凝血障碍性疾病、使用对血液系统造成影响的药物、手术出血较多需特殊止血。做常规的术前准备：术前禁食水8 h，术前检测血红蛋白含量及红细胞压积。各组一般情况的比较见表1。
1.2 方法
所有患者均按TIVA制订的标准进行全麻，异丙酚（2 mg/kg）联合罗库溴铵（0.6 mg/kg）用于诱导麻醉，异丙酚[4～6 mg/（kg・h）]联合芬太尼[0.1～0.2 μg/（kg・h）]用于麻醉维持。诱导麻醉后，手术区域用稀释后的利多卡因28 mL行局部侵润 [（2%利多卡因+1/8000肾上腺素）∶生理盐水（NS）=1∶1]。由于利多卡因4～10 min后起效，肾上腺素诱发的心动过速和血压升高于5～10 min后恢复正常，所以手术应在局部侵润7 min之后开始。所有的腹部整形术均采用常规的外科操作，患者常规取平卧位，排除对术中出血的影响，全麻达成后，手术区域用稀释后的利多卡因28 mL行局部侵润 [（2%利多卡因+1/8000肾上腺素）∶NS=1∶1]，7 min后，手术刀切开皮肤，电刀切开皮下组织，术野放置止血纱布，手术范围上至剑突和两侧肋弓，下至横向腹直肌下缘。通过分析止血纱布中血液的红细胞压积来估计术中的出血量：将术中用于止血的纱布立即放入盛有2000 mL NS的塑料袋内，手术结束后巡回护士将塑料袋里的纱布挤干、取出，然后将袋内的洗液放入红细胞压积计数器内进行分析。术中出血量可以通过下面的公式计算出来：术中出血量（mL）=（2000×洗液中红细胞压积）/术前红细胞压积。术后一般情况不采用特殊止血，如手术出血较多需特殊止血的排除此次试验。切口放置两条1 mm宽的硅胶引流管，常规负压吸引，由于每位患者拔除引流管的时间都不一样，术后出血量以术后48 h内的收集的引流量为准。患者切口术后加压包扎束上合适的腹带，术后第2天早上开始适度活动可以预防深静脉血栓发生，而不用应用肝素。由于患者术前都至少生育过一胎，所以有生育史不作为排除标准。在该研究中，笔者首先重点研究绝经前期的患者以明确围术期出血量与月经周期之间的关系。即便如此，绝经后期患者的数据仍被作为对照。患者的年龄、体重指数和切除的腹部组织的重量也被作为可能影响出血量的因素，因此也具有评估的意义。术后第一个月无严重并发症发生，患者精神状态良好，生命体征平稳。仅有2例患者的切口轻度裂开、二期愈合，无患者需要输血及皮下血肿发生。
为排除技术及主观原因，所有手术均由河南科技大学第一附属医院显微外科及相关人员完成，且成员均不了解患者的月经史情况。所有月经史信息，包括末次月经时间、平时月经周期和之前激素类或含激素类药物的使用情况均在术后采集。
1.3 统计学方法
数据采用SPSS 11.5统计软件分析包分析，用Shapiro-Wilk检验来检验数据是否服从正态分布。用Levene检验进行方差齐性检验。计量资料数据以均数±标准差（x±s）表示，各组之间的差别用单样本的方差分析进行比较，用秩和检验比较各组间预计拔除引流条时间的差异。单样本方差分析P值有统计学意义后应进一步做t检验来明确各组之间有无差异。连续变量间相关分析采用Spearman的等级分析，以P < 0.05为差异有统计学意义。
2 结果
2.1 三组一般情况比较
患者年龄32～61岁，平均（44±7）岁，体重指数为22～35 kg/m2，平均（28±4）kg/m2，切除组织的重量为880～3950 g，平均（2009±798）g，各组间体重指数和切除组织的重量差异无统计学意义（P > 0.05）。
2.2 三组出血量的比较
三组术中出血量及术后48 h内引流量总量分别为94～352mL[平均（196.2±61.0）mL]、85～250mL[（154.4±36.2）mL]，A、B、C组术中的出血量分别为（178±50）、（207±66）、（211±66）mL，术后48 h引流量分别为（144±36）、（159±36）、（163±40）mL。各组间术中和术后出血量数值差异无统计学意义（P > 0.05）。各组间引流管的拔除时间差异无统计学意义（P > 0.05）。见表1。
2.3 年龄、体重指数、切除组织的重量与围术期出血的相关性分析
年龄对术中或者术后的出血量以及引流管拔除的时间无影响，体重指数和切除组织的重量对引流管的拔除时间以及术中、术后出血量有明显的影响。见表2。
3 讨论
该研究强有力地表明对于对月经周期变化不敏感的部位，如腹部，月经周期并不影响其术中及术后的出血量， 对这些对于性激素变化不太敏感的部位进行手术时，月经周期不是决定其术中及术后出血量的关键，而患者的体重指数及术中切除组织的重量才是影响术中术后出血的关键。
术中出血是外科医师常遇到的棘手问题之一，处理方法不当会因此导致严重并发症，甚至死亡。某些外科手术如腹部整形术可能伴随着大量出血，出血量直接影响患者死亡率，是手术成功的关键，减少术中及术后出血量可减少术后并发症、缩短患者的住院时间。临床上已采用各种措施来预防或减少术中及术后出血，如血管收缩剂和低压麻醉的应用。然而，尽管如此在临床工作中有些患者出血量无明显原因的会比别的患者多，大大延长了患者恢复的时间，术中及术后出血问题对于外科医生尚需进一步研究。
月经周期中性激素的变化可能对术中及术后出血造成影响。已经有研究证明在鼻部和部整形手术中月经周期会影响术中及术后出血，且鼻部及组织的变化与月经期中性激素水平变化相符合，如阴道、、鼻黏膜、结膜、咽鼓管的周期性变化，这些部位对性激素的周期性变化较敏感[5-7]。在该研究中，腹部被认为是解剖学上不受月经周期激素变化影响的部位[5]。Perin等已利用超声来观察月经周期中腹部皮下脂肪厚度的变化，然而，事实证实同上述患者中结果一样，月经周期性激素的变化并不影响腹部皮下脂肪厚度的变化。一些患者和外科医生为了减少术中及术后出血量而避开在月经期进行手术，这个提议很大程度上是在临床观察和经验上提出来的。对于腹部这些对性激素不太敏感的部位，并没有客观的依据[3，6-8]。
与女性生殖器及不同，其组织或黏膜对性激素变化比较敏感，如月经期肿胀，乳腺导管上皮细胞分泌减少，细胞萎缩、脱落，水肿消退，乳腺小叶及腺泡的体积缩小，乳腺问质体积增大及腺泡的体积缩小[9]，阴道黏膜水肿充血、分泌物增多，子宫内膜的周期性剥脱。腹部不是性激素作用的靶向部位，腹部血管及组织对性激素的变化不敏感[10]。该研究强烈显示月经周期（即使是更年期）对性激素不敏感的部位其术中及术后出血无影响。但出血量会随体重指数和切除组织重量的增加而增加，体重指数及切除组织重量的增加，横断血管的数量和直径也会更大，直接影响术中出血。
本研究选择腹部整形术患者42例，按照月经周期分成相应组别，并排除其他一切干扰因素，为排除技术及主观原因，所有手术均由河南科技大学第一附属医院显微外科及相关人员完成，且成员均不了解患者的月经史情况。所有月经史信息，包括末次月经时间、平时月经周期和之前激素类或含激素类药物的使用情况均在术后采集。在手术过程中计算术中失血量，术后失血量测定按引流容积计算。各组见术中及术后出血量并无差异（P > 0.05）。该研究强有力地表明对于对月经月经周期变化不敏感的部位，如腹部，月经周期并不影响其术中及术后的出血量。对这些对于性激素变化不太敏感的部位进行手术时，月经周期不是决定其术中及术后出血量的关键。总之，月经周期对某些部位的影响是不可否认的，对于这些对性激素变化比较敏感的部位，在了解患者的月经史之后，避开经期手术史减少术中及术后出血简单而有效的方法。但对于腹部整形手术，其对性激素的变化不敏感，月经周期的变化不会影响其术中及术后出血。
因此，临床上对于一些要求腹部整形手术的患者，我们没有必要刻意的去避开经期手术而给患者带来不必要的麻烦，评估患者的体重指数及其需要切除组织的重量才对预防术中及术后出血有关键意义。关于腹部不受月经周期的性激素变化影响的机制，有待于我们进一步研究。
[参考文献]
[1] Stewart KJ，Stewart DA，Coghlan B，et al. Waterhouse N. Complications of 278 consecutive abdominoplasties [J]. J Plast Reconstr Aesthet Surg，2006，59：1152-1155.
[2] Wilmink H，Spauwen PH，Hartman EH，et al. Preoperative injection using a diluted anesthetic/adrenaline solution significantly reduces blood loss in reduction mammaplasty [J]. Plast Reconstr Surg，1998，102：373-376.
[3] Kop EC，Spauwen PH，Kouwenberg PP，et al. Influence of controlled hypotension versus normotension on amount of blood loss during breast reduction [J]. J Plast Reconstr Aesthet Surg，2009，62：200-205.
[4] Metaxotos NG，Asplund O，Hayes M，et al. The efficacy of bupivacaine with adrenaline in reducing pain and bleeding associated with breast reduction：a prospective trial [J]. Br J Plast Surg，1999，52：290-293.
[5] Villafane O，O'Sullivan ST，Venkataramakrishnan V，et al. Minimising blood loss in reduction mammoplasty by local infiltration of vasoconstrictor agents [J]. Br J Plast Surg，1999，52：421-422.
[6] Liddle AM，Hall AP，Arrowsmith J，et al. Effect of infiltration with ropivacaine on blood loss during reduction mammoplasty [J]. Br J Anaesth，1998，81：974-977.
[7] Thomas SS，Srivastava S，Nancarrow JD，et al. Dilute adrenaline infiltration and reduced blood loss in reduction mammaplasty [J]. Ann Plast Surg，1999，43：127-131.
[8] Bretteville JG. Mammaplasty with reduced blood loss：effect of noradrenalin [J]. Br J Plast Surg，1974，27：31-34.
[9] 朱萍，王亚非，刘琴芳，等.年龄与月经周期对乳腺表观扩散系数差异影响的研究[J].中华放射学杂志，2011，6（6）：538-541.
[10] Findikcioglu K，Findikcioglu F，Demirtas Y，et al. Effect of themenstrual cycle onintraoperativebleeding in rhinoplasty patients [J]. Eur J Plast Surg，2009，32：77-81.
月经周期范文第9篇
关键词：女精神疾病患者；月经周期；病情波动/复发；临床护理
1发病机制
月经是妇女的正常生理现象，月经周期对各种精神疾病均存在一定影响，主要表现为诱发起病，以及促使原有的病情加重[1]。在经期女性性激素和垂体促性腺激素发生变化，雌孕激素水平的高低影响着女性的情绪变化，产生一系列的生理、心理反应。精神病是指在各种致病因素的影响下，大脑机能活动发生紊乱，导致认识、情感、行为和意志等精神活动不同程度障碍的疾病。特别是女性精神病患者，此期间易引起病情复发或促使原有的精神症状加重，自控能力下降，从而出现一些冲动行为；同时女性的情感体验丰富，性格的脆弱性较强，这些生理、心理特征也构成了女性精神病患者在月经期出现意病情（症状）波动，这是精神科临床护理中经常遇到的一种现象，其中以诊断为精神分裂症患者为明显。
2临床表现
月经周期精神疾病患者病情波动/复发时精神症状多样：躁狂状态、抑郁状态、幻觉状态、妄想状态、精神分裂样表现、癔症样症状、意识障碍。特点是：①在月经前2w（排卵期或黄体期）突然发病；②在月经来潮或经净时迅速缓解；③病情不限于情绪波动，可以出现精神病性症状，特别是幻觉；④在缓解时期，具有充分的自知力，迫切要求治疗和预防复发，但到下一周期又自然发病；⑤抗精神病药物或电休克治疗都没有明显疗效，而性激素类药物却有一定效果[2]。
根据患者的生理现象及两种病情不同症状的特点，把月经周期与精神症状联系起来分为三个时期。即：①紊乱疲劳期（月经期）；②症状缓解恢复期（增殖期）；③情绪波动活跃期（分泌期）。从情绪波动、精神症状、睡眠、进食等方面运用心理学的方法分析患者在这三个时期的不同变化。以便掌握患者在各个时期的精神症状及特征，以及护理要点。
3.1紊乱疲劳期 这时期历时1～7d左右。患者由于内分泌调节紊乱，加上精神症状，药物的作用，精神病与内分泌调节很有关系，情绪的波动直接影响月经的周期，月经量不等，时多时少。患者的主要表现有：失眠；疲乏无力、头痛、头晕症状是这个时期的主要精神症状。
3.2症状缓解恢复期：本期历时10d左右。相当于月经周期5～14d，这个时期由于患者月经已过，机体逐步开始恢复正常。加上药物的作用，精神症状开始趋于控制或缓解。
3.3情绪波动活跃期：这时期历时14d左右。相当于月经周期的15～28d。前7d患者精神症状基本控制在正常范围，患者恢复较快，有些患者就认为自己的病已经好了，药也不想继续服，但这往往是发病的前兆。尤其是后7d，是患者精神症状加重或发病期。这时期患者烦躁易怒，早醒这些都是这期主要症状，尤其是情感性精神患者（主要是躁狂症）认为自己病好了，高兴过度，话开始增多，情绪极为不稳，容易激动，常为一点小事与人争吵。早醒多见于（忧郁症），患者心情郁闷、情绪不稳、自卑、悲伤、看阴暗面多，看光明面少。这时期也是忧郁症患者自杀企图最严重的时期。
3进行相关的检查
3.1急性或突然起病，症状表现符合下述之一：①明显不协调性运动兴奋，少数为运动抑制；②伴有轻度意识障碍的行为紊乱；③片断的幻觉、妄想与语言紊乱；④明显的情感高涨或低落。
3.2每次发作时间短暂（不超过2w）
3.3每次发作的症状几乎相同
3.4在6月内至少发作3次
3.5间歇期完全缓解，恢复病前状态
3.6精神障碍明显影响社会功能
4护理措施
4.1加强患者月经期的基础护理 女性经期是一个脆弱的时期，精神患者由于受病态的影响，生活大多不能自理，或生活懒散、不修边幅，不讲卫生。有的女性患者对经期卫生也不知如何处理，因此工作中护理人员更应耐心、细致多加照料，协助患者做好经期护理。如帮助患者穿着柔软、棉质的内裤，为患者准备经期用品，指导患者勤洗勤换，保持会阴的清洁，预防感染与疾病。同时还要观察并记录好患者的月经量、颜色、气味、天数，有无痛经等，并做好记录。入院后护理人员应详细询问患者及家属上次月经来潮的时间，及时提示医生进行必要的检查。月经期还应保证患者的足够营养，饮食方面：要进食清淡、温和、易消化而富有营养的饮食，多饮水，多吃水果、蔬菜，保持大便通畅；忌食生冷、辛辣、过咸的食物，保持电解质的平衡，注意保暖，避免着凉，提高机体抵抗力。
4.2加强患者的病情观察与护理，及时记录与反馈 女性精神病患者，尤其是情感性精神病患者这种月经周期的心理变化更为突出，且缺乏理智，精神分裂症以思维障碍为核心症状，情感性精神病以情感障碍为主要症状。因此，在精神科临床护理工作中要对不同疾病、不同症状、不同时期的精神疾病患者施以不同的护理方法，加强病情观察，注意患者的言谈举止，情绪变化，严防安全隐患发生。患者入院后即由责任护士详细、准确地填写月经来潮的时间和周期，经血量及颜色，躯体反应以及精神症状与月经的关系等，并定出相应的护理措施。在患者住院期间，对其每次月经的情况也进行仔细观察和准确记录，以便不断地修改、完善所制定的护理措施。护士要熟知月经对精神疾病的影响，掌握月经期的病情变化将患者每次行经日期、经前情绪和举止的变化情况、有何躯体不适、行经血量、采取了何种有效的缓解措施等一一记录下来，找出规律，从而有效区别经前综合症与精神病复发先兆，以便更好地进行护理。仔细观察患者的精神症状表现，及时发现病情波动的先兆，对出现病情波动的患者应迅速采取措施，控制兴奋状态，保护患者的安全。要用温和可亲的态度对待患者，避免一切激惹因素；要关心、理解、同情患者，重视患者的倾诉，用安慰和鼓励性言语与患者进行交流，适时地进行心理疏导。及时将患者病情波动的表现记录在护理记录上，并及时将上述信息反馈给主治医师，建议或配合医师根据患者病情变化进行动态的药物剂量的调整，可以在月经来临前适当增加药物剂量，月经过后适当减少剂量。
4.3加强患者的心理护理 护士要熟知月经对精神疾病的影响，要用温和可亲的态度对待患者，避免一切激惹因素；要关心、理解、同情患者，重视患者的倾诉，用安慰和鼓励性言语与患者进行交流，适时地进行心理疏导。稳定他们的情绪，消除种种疑惑，同时采用支持性的心理治疗，应用支持性言语帮助患者度过难关，当患者初步获效时应立即给予表扬。同时可慢慢诱导患者，分析病情，认识疾病的本质，正确对待自己，鼓起勇气，树立生活的信心。特别在精神症状开始趋于控制或缓解，对自己的病情有一定认识的时候，此时患者的情绪也比较稳定，睡眠进食都有所改善，这时期心理护理非常重要。
4.4加强安全管理 经期患者精神症状（言语幻听、被害及嫉妒妄想等）丰富，临床常表现为行为紊乱明显，兴奋躁动，易出现冲动伤人、外跑等，甚至出现消极悲观、企图自杀等行为。不仅扰乱病房秩序，也危及患者生命安全，应迅速采取措施，控制兴奋状态，保护患者的安全。要用温和可亲的态度对待患者，避免一切激惹因素；对极度紊乱和兴奋躁动者暂时给予保护约束，作相应的处理；对严重消极，企图自杀的患者，做到重点防范。服药时要仔细检查口腔，防止患者藏药而影响疗效，或将药物蓄积一次吞服而出现意外；同时观察药物疗效和不良反应；加强危险物品和环境安全的管理，定期进行病房的安全检查，发现安全隐患及时进行整改。
4.5加强患者的健康知识宣教 根据患者的年龄、文化程度等有针对性地进行健康指导、制作指导手册等形式做好疾病知识与月经期的生理过程知识的宣教工作，指导患者及家属对患者月经周期病情波动有一定的认识并采取相应的应对措施；出现病情波动先兆的要指导家属加强患者病情的观察，做好家庭护理、避免刺激患者的情绪[3-7]。
综上所述，月经周期对女精神疾病患者的病情有着相对明显的影响，精神科临床护理工作者对此更应引起重视，并采取相应护理措施进行一定的护理干预，对精神疾病患者的病情波动监测、预防，促进精神疾病患者的早日康复及预防病情波动（复发），减轻了精神疾病患者家属、社会的经济负担。
参考文献：
[1]杜海英，王耀华，李培轩，等.月经与精神疾病[J].四川精神卫生，1996，9（3）：191.
[2]杨丽，唐玉琴，高春凤，等.女性周期性精神病心理变化的特征及护理[D].中国科学院上海冶金研究所；材料物理与化学（专业）博士论文，2000.
[3]刘增垣，主编.现代心神医学[M].沈阳出版社，1988.
[4]北京安定医院主编.精神病护理[M].人民卫生出版，1982，7.
[5]杜海英，王耀华，李培轩，等.月经与精神疾病[M].四川精神卫生，1996，9（3）：191.
[6]马德香.女性精神病患者经期心理症状的变化及护理[J].中国民康医学，2010（16）：2129.
月经周期范文第10篇
关键词：运动生理学；月经周期；雌激素；孕激素；物质代谢；耐力运动；综述
中图分类号：G804.7文献标识码：A文章编号：1006-7116(2009)01-0100-06
Effects of the menstrual cycle on substance metabolism and female athletes
hormone changes of during an endurance exercise
FU De-rong1，LIU Cheng-yi1，SUN Xiao-hua2
（1.Laboratory of Laser Sports Medicine，South China Normal University，Guangzhou 510006，China；
2.Guangdong Vocational Institute of Sports，Guangzhou 510663，China）
Abstract: The authors gave an overview of the effects of the fluctuation of estrogen and progesterone levels in the menstrual cycle on substance metabolism and related hormones during an endurance exercise. Previous researches indicated that during a medium or low intensity exercise estrogen can increase lipid oxidation and reduce glucose utilization, achieving the effect of carbohydrate saving. On the basis of estrogen functions, progesterone promotes lipid oxidation and enhances the aerobic exercise capacity. During an aerobic exercise done in the corpus luteum period with a relatively high level of estrogen and progesterone, the lipid oxidation capacity of the body is higher than the same in the ovarian follicle period, while the carbohydrate utilization capacity of the body is lower than the same in the ovarian follicle period. The menstrual cycle has no significant effect on the basic values and sport induced reaction values of insulin, catecholamine hormone, growth hormone and glucocorticoid. Therefore, during sports training the effects of the menstrual cycle on substance metabolism should be considered in order to fully exert physiological potentials of female athletes.
Key words: sports physiology；menstrual cycle；estrogen；progesterone；substance metabolism；endurance exercise；overview
月经周期是下丘脑-垂体-卵巢轴相互协调及性器官靶组织对性激素反映的结果。随着卵泡发育成熟及排卵，体内雌、孕激素水平呈现明显的周期性波动，子宫内膜随之发生周期性的剥脱和出血。雌、孕激素这种周期性的变化规律不仅调节着女性的生殖功能，还与机体的物质代谢及运动能力有着密切的关系。
1雌、孕激素对物质代谢的影响
耐力性运动中，女性利用脂肪供能比例明显高于男子，而碳水化合物(carbohydrate，CHO)氧化(CHO oxidation，CHOox)能力弱于男性[1]，呈现物质代谢的性别差异与女性体内较高的雌激素水平有关[2-3]。成年男性补充雌激素后可降低运动时呼吸交换率(respiratory exchange ratio，RER)，在65%最大摄氧量(VO2max)强度运动时减少CHOox，提高脂类利用，提高脂肪与CHOox比达31%~75%[4]。闭经女性补充雌激素后，安静时游离脂肪酸(free fatty acids，FFA)明显升高，以65% VO2max跑台运动90 min后再以85% VO2max运动至力竭，与安慰剂组比较，雌激素补充组运动过程中糖显现率(rate of appearance，Ra)及糖消率(rate of disappearance，Rd)均明显下降[5]。人为控制正常女性体内性激素自发性周期变化而给与外源的雌激素时，60% VO2max强度踏车运动60 min，RER明显降低、糖Ra和Rd降低、肌糖原利用估计值(estimated muscle glycogen utilization，EMGU)下降、血浆FFA的浓度升高，CHOox呈现节省化，而脂类利用增加[3]。雌激素补充同样可降低男性耐力运动时机体糖Ra和Rd[4]，从而调节运动时血糖平衡。
动物实验显示相似结果。雄性大鼠注射雌激素可明显增加其运动肌对脂类的利用[6]，在2 h的次最大强度跑台运动中，与对照组比较，肝糖原、肌糖原下降的速度显著减慢[7]，糖的消耗明显减少，脂肪酸氧化增加，血乳酸浓度降低，运动成绩提高[8]。卵巢切除的大鼠骨骼肌结合胰岛素能力下降，骨骼肌减少了对胰岛素诱导的2-脱氧-D-葡萄糖(insulin-stimulated 2-deoxy-D-glucose，2-DOG)的摄取，减少了肌糖原的合成[9-10]，糖异生增强，肝、心肌、骨骼肌等各组织中糖原的含量减少，血糖升高[11]。雌激素补充可恢复骨骼肌结合胰岛素的能力，恢复对2-DOG的正常摄取[9-10]，降低糖异生，增加肌糖原及肝糖原的沉积[11]，减少运动时对糖的氧化利用，出现碳水化合物的节省化效应[12]。
雌激素增加脂肪氧化，减少运动时CHO消耗，与其调节物质代谢过程中相关酶活性以及有关激素的敏感性有关。实验证明，雌激素可提高运动肌中脂蛋白脂肪酶(lipoprotein lipase，LPL)活性，升高股红肌与脂肪组织中LPL活性比及心肌与脂肪组织中LPL活性比，促进脂肪酸向运动肌的流向[6]；提高肉碱棕榈酰基转移酶活性，并可逆转大鼠因卵巢切除所致的β-羟脂酰辅酶A脱氢酶(beta-Hydroxyacyl-CoA dehydrogenase β-HAD)活性的降低，使之恢复正常水平[13]；增加胰岛素的敏感性及与靶细胞结合的能力[10]；调节糖原合成酶及柠檬酸合成酶的活性[14]；减少中等强度运动时肾上腺素的分泌量[5]；提高白色脂肪细胞中腺苷酸环化酶活性，增加肾上腺素的脂解作用[15]；减少运动过程中EMGU及糖Rd[3]等。雌激素通过上述多种方式减少糖利用，增加脂肪氧化供能比。
孕激素调节物质代谢的作用没有雌激素明显。单独使用孕激素对卵巢切除的大鼠糖代谢动力学参数的恢复影响不明显[9]。与雌激素联合应用时，在雌激素作用基础上促进脂类氧化加强[16-18]，并增加有氧运动能力[18]。给健康女性口服避孕药并进行递增负荷实验，随着运动强度的增加，高孕激素组(35 µg ethinyl estradiol和1 000 µg norethisterone。high progestin，高Ph)峰值摄氧量(peak oxygen uptake VO2peak)升高的幅度大于低孕激素组(35 µg ethinyl estradiol和500 µg norethisterone。low progestin，低PL)，RER低于低P组，峰值功力输出(peak power output，Wlpeak)有升高趋势，运动至疲劳的时间延长。在以75% VO2peak强度持续运动20 min时，高Ph组氧脉搏增加，RER降低，脂类的氧化增强，运动至力竭的时间相对延长，峰值摄氧量有上升的趋势，总做功量增加，但功力输出、心率、峰值乳酸浓度不受孕激素浓度的影响[18]。孕激素对物质代谢的作用可能与其降低己糖激酶的活性[19]、减弱磷酸戊糖途径代谢[20]、降低脂肪细胞对胰岛素的敏感性[21]、降低脂肪酸的合成[22]等多种调节途径有关。
2月经时相对物质代谢的影响
月经周期的不同时相中，雌、孕激素水平会有明显变化。黄体期雌激素的水平比卵泡期升高3倍左右，孕激素升高达20倍左右(血清雌激素：卵泡早期0.18~0.22 nmol/L，黄体期0.55~0.7 nmol/L；血清孕激素：卵泡早期＜3 nmol/L，黄体期32~64 nmol/L)[23]。这种变化对运动时物质代谢会有一定的影响，主要体现在对糖的Ra、Rd、糖代谢清除率(glucose metabolic clearance rate，MCR)[17，24-25]及脂类的Ra和Rd以及RER的调节上[17]。
2.1对碳水化合物代谢的影响
CHO在运动中的供能比例随着运动强度的增大而增加[26-27]。当运动强度达65% VO2max以上时，CHOox迅速上升，脂类氧化明显降低[26]，强度达(89±3)%VO2max，((92±1)%HRmax)以上时，脂类氧化供能比几乎可忽略不计[28]。在接近VO2max强度运动时，肌糖原、肝糖原是能量的主要来源[29]。
安静时，月经周期时相对糖代谢动力学、血乳酸、RER影响不明显[17，25，30-31]。运动状态下，月经周期对物质代谢的影响作用与运动强度、运动水平及运动持续的时间等有关。以35% VO2max及60% VO2max强度跑台运动30 min，正常月经周期的普通女性黄体中期氧化利用CHO的比例明显低于卵泡中期，当运动强度达75% VO2max时，CHOox利用在卵泡、黄体两期中没有差异[16]。有运动习惯的女性以70%乳酸阈(lactate threshold，LT)强度功率自行车运动25 min，总CHOox、血乳酸浓度、RER、糖Ra或Rd在卵泡期和黄体期中没有差异，但在紧接其后以90% LT强度继续运动25 min时，黄体期总CHOox比卵泡期低13%，糖Ra低于卵泡期14%，Rd低于卵泡期15%，血乳酸、RER亦明显低于卵泡期。血糖浓度在安静及70% LT或90% LT强度运动时，黄体期的值均高于卵泡期[17]。Devries等[24]的实验也显示休闲运动青年女性在65% VO2peak强度功率车运动90 min时，黄体期(月经周期的(20±1) d)Ra、Rd和MCR值均低于卵泡期(月经周期的(9±1)d），黄体期骨骼肌利用前糖原、大糖原、总糖原比卵泡期分别降低30%、16%及24%；血糖及肌糖原在总CHOox中的贡献率，卵泡期为29%和71%，黄体期为32%和68%，差异不明显。但也有实验显示中等强度运动时月经周期时相对CHO代谢没有明显影响作用[25]。
如果在运动的前中后过程中合理补充糖饮料，月经周期时相对糖代谢的影响作用就会减弱或消失。Campbell等[32]对中等程度训练的8名月经周期正常的女性进行70% VO2peak强度自行车运动2 h，紧接着再进行4 kJ/kg的最快速度定量计时测试，结果显示非补糖组卵泡期CHOox百分比((80.1±1.2)%)明显高于黄体期((77.0±1.0)%)(P
2.2对脂类代谢的影响
脂肪的氧化利用是中低强度运动时的主要能量来源[26，33]，耐力训练可提高机体利用脂肪的能力[34]。中等程度训练者最大氧化脂肪的运动强度范围为(55±3)%~(72±4)% VO2max[28]，而普通人群为(48.3±0.9)% VO2max[35]。运动方式对脂类的氧化率亦有影响作用，同等强度运动时，跑步运动者脂类的氧化利用率高于自行车运动者[36]。
安静状态下月经周期时相对脂类的代谢没有影响[17，37]。在35% VO2max及60% VO2max强度跑台运动时，正常月经周期的普通女性黄体中期氧化脂肪的能力明显高于卵泡中期，当运动强度达75% VO2max时，这种差异消失[16]。Zderic等[17]对运动习惯的民众进行70% LT强度功率自行车运动25 min，总脂类的氧化在卵泡期和黄体期没有差异，但在紧接其后的90% LT强度运动时，黄体期总脂类的氧化利用高于卵泡期23%。Campbell等[32]实验也显示在70% VO2peak强度运动时，中等程度训练的女性黄体期脂类氧化百分比明显高于卵泡期。运动过程中合理补充糖饮料，可降低月经各期中脂类的氧化百分比，并消除卵泡黄体两期中氧化脂类的差异[32]。但Horton等[38]实验却显示50%VO2max强度90 min功力车运动时，月经时相对脂类的代谢没有明显影响作用。
月经周期时相对CHO及脂类代谢的影响作用与运动者的运动水平、运动模式、运动强度以及运动时间的选择有关。高水平运动者氧化脂类的能力高于低水平运动者。运动模式不同募集的运动肌群不同，氧化能源有所差异。运动强度与运动时间的安排直接决定了CHO及脂类的功能比例。运动者个体间性激素周期性波动幅度的差异对物质代谢也可能存在着一定影响作用。
3月经周期对相关激素水平的影响
体内物质代谢受多种激素的调节，如胰岛素、儿茶酚胺类激素、肾上腺皮质激素以及生长激素等，这些激素的水平变化可直接影响机体的物质代谢及运动能力的发挥。
实验显示，安静状态下胰岛素浓度在正常月经周期的卵泡期和黄体期中没有明显差异[17，25]，但对其敏感性存在不同观点。Diamond[39]和Toth等[40]的实验显示胰岛素敏感性不受月经周期时相的影响，而Valdes[37]和Escalante[41]等的实验表明胰岛素敏感性在黄体期时明显下降(前者P＜0.007，后者P＜0.001)。运动可提高胰岛素的敏感性[42]，降低体内胰岛素的水平[43-44]。月经周期的不同时期运动，对胰岛素浓度的影响各实验结果间存在一定差异。Zderic等[17]报道在月经不同时期以70% LT或90% LT的不同强度运动，胰岛素在运动中的反应水平不受月经周期时相的影响；Horton TJ等[25]实验显示，50% VO2max强度90 min运动时，胰岛素浓度在黄体中期明显高于卵泡早期和卵泡中期(P＜0.001)，伴有明显的血糖升高的同步变化，尤其在运动的最初45 min内；而Braun等[43]的实验则显示52% VO2peak强度功率车运动15 min时，黄体期胰岛素的值明显低于卵泡期，随运动时间的延长这种差异消失。运动过程中合理补充糖饮料可降低长时间运动引起的血糖及胰岛素水平的下降，延长至疲劳的时间[32，45]。
运动明显升高儿茶酚胺类激素的水平[25，30，46-47]，在接近100% VO2max强度运动时，肾上腺素浓度可升高14倍，去甲肾上腺素可升高18倍[47]。运动水平对其存在影响作用，运动员安静及运动时肾上腺素的浓度均高于非运动员[46]。月经周期时相对儿茶酚胺类激素不产生明显影响[30，48]。Dean[30]的实验显示在卵泡早期、卵泡中期及黄体中期中，肾上腺素的安静值分别为(24±2)、(23±3)、(26±5) pg/mL，去甲肾上腺素的安静值分别为(242±60)、(229±33)、(225±16) pg/mL；在乳酸阈强度运动结束时，肾上腺素的质量浓度分别为(418±110)、(336±70)、(353±51) pg/mL，去肾上腺素的质量浓度分别为(3 800±1 109)、(4 135±1 076)、
(4 034±961) pg/mL，均没有明显差异。Braun[43]及Botcazou等[48]的实验也同样说明了肾上腺素及去甲肾上腺素的水平变化与月经周期时相没有联系，而与运动强度及运动时间关系密切[25，48]。
安静时肾上腺皮质激素及促皮质激素(adrenocorticotropic hormone，ACTH)浓度不受月经周期的影响，以70% VO2max运动明显升高该2激素的水平，但在月经周期的不同时相中其对运动刺激的反应相似[49]。Horton等[25]的实验显示可的松的安静值在月经周期的不同阶段水平相似，在50% VO2max强度90 min运动时，可的松水平明显升高，并存在时间效应关系，但这种反应不受月经周期时间差别的影响。Braun[43]、Bailey[45]及Kanaley[50]的实验同样反映出可的松水平在安静时及运动时均不受月经周期时相的影响。运动过程中合理补糖对可的松浓度有影响。在70% VO2max强度运动至疲劳的实验中，运动至60 min时，补糖组可的松浓度大于非补糖组((357±26)、(274±28) nmol/L)，但运动至疲劳时，补糖组可的松水平低于非补糖组((486±57)、(625±59) nmol/L)[45]。
运动明显升高血生长激素(growth hormone GH)水平，其峰值幅度与运动负荷量明显相关[51-53]。年龄、性别及运动水平对GH的浓度有影响作用。优秀女子运动员GH基础值高于优秀男子运动员[52]，年轻女性GH对运动刺激的反应释放量高于同龄男子及年长者[51]，长期耐力训练可提高GH的敏感性，降低GH的基础值及对运动刺激的反应值[53]。实验显示，月经周期对GH安静值及运动刺激的反应值均无明显影响作用[17，54]。以60% VO2max强度运动90 min时，卵泡早期、卵泡中期及黄体中期的GH反应值分别是(37.5±11.5)、(61.9±11.5)及(48.1±12.8) μg/L，没有明显差异[54]。Zderic等[17]报道GH安静值在卵泡期((1.4±0.03) ng/mL)及黄体期((1.6±0.19) ng/mL)中相似，以70%和90% LT运动后，黄体期GH值(70% LT(11.6±4.2) ng/mL，90% LT(11.1±2.4) ng/mL)稍高于卵泡期(70% LT(8.8±4.3) ng/mL，90% LT(8.5±2.6) ng/mL)，但差异无显著性。
参考文献：
[1] Devries M C，Hamadeh M J，Phillips S M，et al. Menstrual cycle phase and sex influence muscle glycogen utilization and glucose turnover during moderate-intensity endurance exercise[J]. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol，2006，291(4)：1120-1128.
[2] D'Eon T，Braun B. The roles of estrogen and progesterone in regulating carbohydrate and fat utilization at rest and during exercise[J]. J Womens Health Gend Based Med，2002，11(3)：225-237.
[3] D'Eon T M，Sharoff C，Chipkin S R，et al. Regulation of exercise carbohydrate metabolism by estrogen and progesterone in women[J]. Am J Physiol Endocrinol Metab，2002，283(5)：E1046-1055.
[4] Devries M C，Hamadeh M J，Graham T E，et al. 17 beta-estradiol supplementation decreases glucose rate of appearance and disappearance with no effect on glycogen utilization during moderate intensity exercise in men[J]. J Clin Endocrinol Metab，2005，90(11)：6218-6225.
[5] Ruby B C，Robergs R A，Waters D L，et al. Effects of estradiol on substrate turnover during exercise in amenorrheic females[J]. Med Sci Sports Exerc，1997，29(9)：1160-1169.
[6] Ellis G S，Lanza-Jacoby S，Gow A，et al. Effects of estradiol on lipoprotein lipase activity and lipid availability in exercised male rats[J]. J Appl Physiol，1994，77(1)：209-215.
[7] Rooney T P，Kendrick Z V，Carlson J，et al. Effect of estradiol on the temporal pattern of exercise-induced tissue glycogen depletion in male rats[J]. J Appl Physiol，1993，75(4)：1502-1506.
[8] Kendrick Z V，Ellis G S. Effect of estradiol on tissue glycogen metabolism and lipid availability in exercised male rats[J]. J Appl Physiol，1991，71(5)：1694-1699.
[9] Campbell S E，Febbraio M A. Effect of the ovarian hormones on GLUT4 expression and contraction-stimulated glucose uptake[J]. Am J Physiol Endocrinol Metab，2002，282(5)：E1139-1146.
[10] Kumagai S，Holmäng A，Björntorp P. The effects of oestrogen and progesterone on insulin sensitivity in female rats[J]. Acta Physiol Scand，1993，149(1)：91-97.
[11] Ahmed-Sorour H，Bailey C J. Role of ovarian hormones in the long-term control of glucose homeostasis, glycogen formation and gluconeogenesis[J]. Ann Nutr Metab，1981，25(4)：208-212.
[12] Kendrick Z V，Steffen C A，Rumsey W L，et al. Effect of estradiol on tissue glycogen metabolism in exercised oophorectomized rats[J]. J Appl Physiol，1987，63(2)：492-496.
[13] Campbell S E，Febbraio M A. Effect of ovarian hormones on mitochondrial enzyme activity in the fat oxidation pathway of skeletal muscle[J]. Am J Physiol Endocrinol Metab，2001，281(4)：E803-808
[14] Beckett T，Tchernof A，Toth M J. Effect of ovariectomy and estradiol replacement on skeletal muscle enzyme activity in female rats[J]. Metabolism，2002，51(11)：1397-1401.
[15] Pasquier Y N，Pecquery R，Giudicelli Y. Increased adenylate cyclase catalytic activity explains how estrogens “in vivo” promote lipolytic activity in rat white fat cells[J]. Biochem Biophys Res Commun，1988，154(3)：1151-1159.
[16] Hackney A C，McCracken-Compton M A，Ainsworth B. Substrate responses to submaximal exercise in the midfollicular and midluteal phases of the menstrual cycle[J]. Int J Sport Nutr，1994，4(3)：299-308.
[17] Zderic T W，Coggan A R，Ruby B C. Glucose kinetics and substrate oxidation during exercise in the follicular and luteal phases [J]. J Appl Physiol，2001，90(2)：447-453.
[18] Redman L M，Scroop G C，Westlander G，et al. Effect of a synthetic progestin on the exercise status of sedentary young women[J]. J Clin Endocrinol Metab，2005，90(7)：3830-3837.
[19] Sutter-Dub M T，Vergnaud M T. Progesterone and glucose metabolism in the female rat adipocyte：effect on hexokinase activity[J]. J Endocrinol，1982，95(3)：369-375.
[20] Sutter-Dub M T，Dazey B，Hamdan E，et al. Progesterone and insulin-resistance：studies of progesterone action on glucose transport, lipogenesis and lipolysis in isolated fat cells of the female rat[J]. J Endocrinol，1981，88(3)：455-462.
[21] Sutter-Dub M T，Kaaya A，Sfaxi A，et al. Progesterone and synthetic steroids produce insulin resistance at the post-receptor level in adipocytes of female rats[J]. Steroids，1988，52(5-6)：583-608.
[22] Cordoba P，Kaaya A，Richard O，et al. Inhibition of glucose metabolism by progesterone in adipocytes: role of protein synthesis[J]. Can J Physiol Pharmacol，1991，69(12)：1861-1867.
[23] 曹泽毅. 中华妇产科学[M]. 北京：人民卫生出版社，1999：35-58.
[24] Devries M C，Hamadeh M J，Phillips S M，et al. Menstrual cycle phase and sex influence muscle glycogen utilization and glucose turnover during moderate-intensity endurance exercise[J]. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol，2006，291(4)：R1120-1128.
[25] Horton T J，Miller E K，Glueck D，et al. No effect of menstrual cycle phase on glucose kinetics and fuel oxidation during moderate-intensity exercise[J]. Am J Physiol Endocrinol Metab，2002，282(4)：E752-762.
[26] Romijn J A，Coyle E F，Sidossis L S，et al. Substrate metabolism during different exercise intensities in endurance-trained women[J]. J Appl Physiol，2000，88(5)：1707-1714.
[27] De Feo P，Di Loreto C，Lucidi P，et al. Metabolic response to exercise[J]. J Endocrinol Invest，2003，26(9)：851-854.
[28] Achten J，Gleeson M，Jeukendrup A E. Determination of the exercise intensity that elicits maximal fat oxidation[J]. Med Sci Sports Exerc，2002，34(1)：92-97.
[29] 林文. 运动生物化学[M]. 北京：人民体育出版社，1999：50-51.
[30] Dean T M，Perreault L，Mazzeo R S，et al. No effect of menstrual cycle phase on lactate threshold[J]. J Appl Physiol，2003，95(6)：2537-2543.
[31] Smekal G，von Duvillard S P，Frigo P，et al. Menstrual cycle: No effect on exercise cardiorespiratory variables or blood lactate concentration[J]. Med Sci Sports Exerc，2007，39(7)：1098-1106.
[32] Campbell S E，Angus D J，Febbraio M A. Glucose kinetics and exercise performance during phases of the menstrual cycle：Effect of glucose ingestion[J]. Am J Physiol Endocrinol Metab，2001，281(4)：E817-825.
[33] Horowitz J F，Klein S. Lipid metabolism during endurance exercise[J]. Am J Clin Nutr，2000，72(2 Suppl)：558S-563S.
[34] Friedlander A L，Jacobs K A，Fattor J A，et al. Contributions of working muscle to whole body lipid metabolism are altered by exercise intensity and training[J]. Am J Physiol Endocrinol Metab，2007，292(1)：E107-116.
[35] Venables M C，Achten J，Jeukendrup A E. Determinants of fat oxidation during exercise in healthy men and women: a cross-sectional study[J]. J Appl Physiol，2005，98(1)：160167.
[36] Achten J，Venables M C，Jeukendrup A E. Fat oxidation rates are higher during running compared with cycling over a wide range of intensities[J]. Metabolism，2003，52(6)：747-752.
[37] Valdes C T，Elkind-Hirsch K E. Intravenous glucose tolerance test-derived insulin sensitivity changes during the menstrual cycle[J]. J Clin Endocrinol Metab，1991，72(3)：642-646.
[38] Magkos F，Patterson B W，Mittendorfer B. No effect of menstrual cycle phase on basal very-low-density lipoprotein triglyceride and apolipoprotein B-100 kinetics[J]. Am J Physiol Endocrinol Metab，2006，291(6)：E1243-1249.
[39] Diamond M P，Jacob R，Connolly-Diamond M，et al. Glucose metabolism during the menstrual cycle. Assessment with the euglycemic, hyperinsulinemic clamp[J]. J Reprod Med，1993，38(6)：417-421.
[40] Toth E L，Suthijumroon A，Crockford P M，et al. Insulin action does not change during the menstrual cycle in normal women[J]. J Clin Endocrinol Metab，1987，64(1)：74-80.
[41] Escalante Pulido J M，Alpizar Salazar M. Changes in insulin sensitivity, secretion and glucose effectiveness during menstrual cycle[J]. Arch Med Res，1999，30(1)：19-22.
[42] Horowitz J F. Exercise-induced alterations in muscle lipid metabolism improve insulin sensitivity[J]. Exerc Sport Sci Rev，2007，35(4)：192-196.
[43] Braun B，Mawson J T，Muza S R，et al. Women at altitude：carbohydrate utilization during exercise at 4,300 m[J]. J Appl Physiol，2000，88(1)：246-256.
[44] Engdahl J H，Veldhuis J D，Farrell P A. Altered pulsatile insulin secretion associated with endurance training[J]. J Appl Physiol，1995，79(6)：1977-1985.
[45] Bailey S P，Zacher C M，Mittleman K D. Effect of menstrual cycle phase on carbohydrate supplementation during prolonged exercise to fatigue[J]. J Appl Physiol，2000，88(2)：690-697.
[46] Kjaer M，Farrell P A，Christensen N J，et al. Increased epinephrine response and inaccurate glucoregulation in exercising athletes[J]. J Appl Physiol，1986，61(5)：1693-1700.
[47] Marliss E B，Simantirakis E，Miles P D，et al. Glucose turnover and its regulation during intense exercise and recovery in normal male subjects[J]. Clin Invest Med，1992，15(5)：406-419.
[48] Botcazou M，Gratas-Delamarche A，Allain S，et al. Influence of menstrual cycle phase on catecholamine response to sprint exercise in the woman[J]. Appl Physiol Nutr Metab，2006，31(5)：604-611.
[49] Galliven E A，Singh A，Michelson D，et al. Hormonal and metabolic responses to exercise across time of day and menstrual cycle phase[J]. J Appl Physiol，1997，83(6)：1822-1831.
[50] Kanaley J A，Boileau R A，Bahr J M，et al. Cortisol levels during prolonged exercise：the influence of menstrual phase and menstrual status[J]. Int J Sports Med，1992，13(4)：332-336.
[51] Wideman L，Weltman J Y，Hartman M L，et al. Growth hormone release during acute and chronic aerobic and resistance exercise: recent findings[J]. Sports Med，2002，32(15)：987-1004.
[52] Sartorio A，Agosti F，Marazzi N. Gender-, age-, body composition-and training workload-dependent differences of GH response to a discipline-specific training session in elite athletes: a study on the field[J]. J Endocrinol Invest，2004，27(2)：121-129.
[53] Godfrey R J，Madgwick Z，Whyte G P. The exercise-induced growth hormone response in athletes[J]. Sports Med，2003，33(8)：599-613.