香蕉枯萎病诱导抗性的小区试验

时间:2022-09-01 07:04:13

香蕉枯萎病诱导抗性的小区试验

摘要:在田间小区栽培的香蕉苗上,接种串珠镰刀菌(Fusarium moniliforme)、喷施饱和石灰水和无菌水7 d后,接种尖孢镰刀菌(Fusarium oxysporum),测定过氧化物酶(POD)、超氧化物歧化酶(SOD)、过氧化氢酶(CAT)活性。结果表明,饱和石灰水能够诱导香蕉植株对尖孢镰刀菌产生抗性,串珠镰刀菌与尖孢镰刀菌复合侵染,加重了病害的发生。

关键词:香蕉枯萎病;石灰水;串珠镰刀菌;尖孢镰刀菌;诱导抗性

中图分类号:S436.68 文献标识码:A 文章编号:0439-8114(2012)16-3485-03

Field Plot Test on Induced Resistance of Banana Fusarium Wilt

WANG Fang,LI Jing,TANG Bi-tao

(Foshan University of Science and Technology, Foshan 528000,Guangdong,China)

Abstract: In the field plot test, banana plants were treated with Fusarium moniliforme,saturated limewater and sterile water respectively and inoculated with Fusarium oxysporum 7 days later; and the activity of peroxidase (POD), superoxide dismutase (SOD), catalase (CAT)were determined. The results showed that limewater could induce resistance of banana to Fusarium oxysporum. Complex infection of both F. oxysporum and F. moniliforme aggravated diseases occurrence.

Key words: banana Fusarium wilt; limewater; Fusarium moniliforme; Fusarium oxysporum; induced resistance

香蕉枯萎病是由尖孢镰刀菌古巴专化型[Fusarium oxysporum f.sp.cubense(FOC)]引起的香蕉毁灭性病害,防治困难[1],被列为我国进口检疫对象[2],所谓的“蕉癌”即是香蕉枯萎病[3],国内最早于1960年在广西的西贡蕉上发现此病[4],2007年该病导致海南、广东地区多数蕉农损失惨重。加强香蕉枯萎病的防治迫在眉睫,目前主要防治方法有严格执行检疫制度,限制蕉苗和马尼拉麻苗及其所附带的土壤由病区输入;选栽无病种苗和抗病品种;隔离病区,毁灭病株;病土处理;施用杀菌药剂。生物防治作物病害越来越受到人们的重视[5],从香蕉地土壤中分离到对香蕉枯萎病有抑制作用的拮抗菌,并对其抑菌作用进行测定,开发防治香蕉枯萎病的生防制剂是今后研究和开发的方向之一。试验以串珠镰刀菌(Fusarium moniliforme)、饱和石灰水作为诱导因子,模拟大田条件,通过对相关酶的活性的测定[6],研究香蕉枯萎病的诱导抗性,探索香蕉枯萎病诱导抗病性的生理指标。

1 材料与方法

1.1 试验材料

1.1.1 供试菌种及石灰水 串珠镰刀菌、尖孢镰刀菌,由佛山科学技术学院生命科学学院试验基地植物病理实验室提供;饱和石灰水为实验室自制。

1.1.2 香蕉苗 由佛山科学技术学院生命科学学院试验基地提供,组培苗,田间小区栽培。

1.1.3 培养基 马铃薯葡萄糖琼脂(PDA)培养基、玉米粒培养基。

1.2 试验方法

1.2.1 孢子悬浮液的配制和接种 菌种经PDA培养基活化培养后,接入玉米粒培养基。取100 g玉米粒培养基培养15 d的菌落,加入1 000 mL无菌水,10 000 r/min离心5 min,取出孢子悬浮液备用。

试验设3个处理,10次重复。处理采用喷洒方式,处理1为无菌水(对照),处理2为串珠镰刀菌孢子悬浮液,处理3为饱和石灰水。处理7 d后接种尖孢镰刀菌孢子悬浮液,采用土壤接种方法。

1.2.2 酶的提取与活性测定 接种尖孢镰刀菌孢子悬浮液后第七天进行酶的提取与活性测定。取香蕉叶片为试验材料,测定酶活性,3次重复。

过氧化物酶(POD)的提取与活性测定方法参照文献[6],以每克鲜样品酶液每分钟OD470 nm变化1.0为1个酶活单位(U)。

POD活性(U)=■。式中,t:反应时间(min);VT:样液总体积(mL);V1:测定时样品用量(mL);FW:样品鲜重(g)。

超氧化物歧化酶(SOD)的提取与测定方法参照文献[3],以每克鲜样品酶液抑制NBT光化还原50%为1个酶活单位(U)。

SOD活性(U)=■。式中,A0:对照管的OD值;AS:样品管的OD值;VT:样液总体积(mL);V1:测定时样品用量(mL);FW:样品鲜重(g);t:反应时间(min)。

过氧化氢酶(CAT)的提取与测定方法参照文献[3],以每克鲜样品酶液每分钟OD240 nm减少0.1为1个酶活单位(U)。

CAT活性(U)=■。式中,t:反应时间(min);VT:样液总体积(mL);V1:测定时样品用量(mL);FW:样品鲜重(g)。

2 结果与分析

2.1 3个处理的POD活性

3个处理香蕉植株的POD活性测定结果见图1。串珠镰刀菌、饱和石灰水及对照3个处理的POD活性随反应时间的延长均呈下降趋势。反应1 min各处理的情况为,饱和石灰水34.56 U,串珠镰刀菌17.92 U,对照32.60 U;反应2 min各处理的情况为,饱和石灰水33.62 U,串珠镰刀菌16.85 U,对照31.25 U;反应3 min各处理的情况为,饱和石灰水30.82 U,串珠镰刀菌14.39 U,对照 26.50 U;反应4 min各处理的情况为,饱和石灰水29.96 U,串珠镰刀菌13.76 U,对照23.59 U;反应5 min各处理的情况为,饱和石灰水28.76 U,串珠镰刀菌13.05 U,对照18.54 U。饱和石灰水处理的POD活性明显高于对照,而串珠镰刀菌处理的低于对照。

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