一种大鼠蛛网膜下腔出血动物模型的建立

时间:2022-06-09 05:40:51

一种大鼠蛛网膜下腔出血动物模型的建立

【摘要】目的:建立一种成年大鼠蛛网膜下腔出血(SAH)模型。方法:使用立体定位仪在显微操作下行枕大池两次注射静脉血建立大鼠SAH模型。术后第一天,4%多聚甲醛灌注后取脑。 脑组织用异戊烷-液氮快速冰冻并-80℃低温保存,行冰冻切片。MASSON染色观察蛛网膜下腔。结果:(1)动物模型实验成功率为83.33%;(2)MASSON染色显示脑膜的结构保存良好,蛛网膜下腔有大量的血细胞。结论:此实验为研究SAH提供了较好的动物模型。

【关键词】蛛网膜下腔出血;蛛网膜下腔纤维化;柔脑膜;MASSON染色

文章编号:1009-5519(2008)07-0956-02 中图分类号:R6 文献标识码:A

蛛网膜下腔出血(subarachnoid hemorrhage SAH)是一种常见综合征,不仅可引起血管痉挛[1],而且还可以引起蛛网膜下腔纤维化,甚至导致慢性脑积水的发生[2],但机制尚不十分清楚,目前相关研究较少。柔脑膜是蛛网膜和软脑膜的合称,两者之间隔以蛛网膜下腔并以小梁相联系[3]。本研究成功地建立了一种成年大鼠SAH模型,为进一步研究SAH提供了较好的动物模型,现报道如下。

1 材料与方法

1.1 实验动物:18只SD雄性成年大鼠,体重(200±10)g(由中南大学湘雅医学院动物部提供)。

1.2 主要试剂与仪器:Masson三色盒(珠海贝索生物技术有限公司),异戊烷(国药集团化学试剂有限公司提供),液氮、甲基纤维素(中南大学湘雅三医院病理科提供),手术显微镜及显微手术器械(上海医用光学仪器厂),脑立体定位仪(Narishge, Japan)

1.3 方法

1.3.1 动物模型的制作:术前禁食24 h,自来水饲养。用10%水合氯醛300mg/kg经右侧腹腔注射麻醉后,头颈部备皮及左侧腹股沟区备皮。仰卧位常规消毒铺巾,切开左侧腹股沟区皮肤,找到左侧股静脉并置管备用;取俯卧位使用立体定位仪固定大鼠,颈部稍屈。常规消毒铺巾,参照Konczalla方法[4],在显微镜下沿头颈部交界处作一长约3~4 mm的纵切口,暴露环枕筋膜,先用0.45号注射针头(针尖需较钝)固定在立体定位仪纵臂上,垂直穿刺枕大池,抽出清亮脑脊液0.1 ml后,从原股静脉置管处抽0.2 ml新鲜血缓慢注入枕大池,注射完后留针5 min,拔针后用医用耳脑胶封闭针眼,缝合切口。青霉素腹腔注射抗炎,头低位放置30 min。术后24 h再次以同样的方法注射0.2 ml股静脉血。生理盐水组操作与实验组完全相同,但两次注射均以生理盐水代替自体血。

1.3.2 取材:腹腔麻醉下灌注固定,室温下保存30 min后断头仔细咬除颅骨取出硬膜及脑组织。甲基纤维素糊状液包埋组织。采用异戊烷-液氮快速冷冻,即将盛异戊烷的金属小杯放入盛有液氮的大杯中,见异戊烷有白色糊状物出现时放入组织包埋块[5],约20秒后见组织包埋块变白变硬后取出(注意处理时间勿过长,时间过长会使组织变脆裂开,导致切片时不能成片)。冰冻组织块置- 80 ℃冰箱中保存待测。

1.3.3 切片:在顶部正中处行冠状冰冻切片,厚度为12 ?滋m。切片于室温下放置1天,待切片干后,严格按试剂盒步骤进行MASSON染色。

2 结果

在制作SAH动物模型过程中,实验组不能耐受第一次手术死亡1只,不能耐受二次手术死亡2只,动物模型实验成功率为83.33%。MASSON染色显示脑膜的结构保存良好,蛛网膜下腔有大量的血细胞(见图1、图2)。

3 讨论

迄今报道的SAH动物模型主要用于研究脑血管痉挛变化,而研究SAH后蛛网膜下腔纤维化及脑积水的较少见。由于枕大池空间大,颅压升高相对缓慢,目前枕大池两次注血法被认为是较成熟的模型。但枕大池穿刺可能直接损伤脑干致死,死亡率相当较高[5]。我们在以下几方面加以改进:(1)在立体定位仪上,使用显微操作,能在最小损伤下充分暴露环枕筋膜,并减少穿刺的盲目性。(2)使用立体定位仪机械穿刺有利地减少了损伤脑干的可能。(3)抽出清亮脑脊液0.1ml再缓慢注血避免急性颅高压。(4)延缓拔针,术后用耳脑胶封针孔,防止注射的血液溢出。(5)实验过程严格的无菌操作并术后抗炎防止颅内感染。我们动物模型实验提高了成功率,减少了创伤,降低了死亡率。

我们认为,两次枕大池注射自体血及脑组织冰冻切片后行MASSON染色,能较好地保存蛛网膜下腔结构,是研究SAH后柔脑膜病理变化可行的实验方法,并且实验相对简单,可操作性强。

参考文献:

[1] Bassiouni H,Schulz R,Dorge H,et al. The impact of subarachnoid hemorrhage on regional cerebral blood flow and large-vessel diameter in the canine model of chronic vasospasm[J].Stroke Cerebrovasc Dis,2007,16(2):45.

[2] Whitelaw A,Cherian S,Thoresen M. Posthaemorrhagic ventricular dilatation: new mechanisms and new treatment[J].Acta Paediatr Suppl,2004,93(444):11.

[3] 成令忠,钟翠平,蔡文琴. 现代组织学[M]. 第一版.上海:上海科技文献出版社,2003.456.

[4] Konczalla J,Vatter H,Weidauer S,et al. Alteration of the cerebrovas-cular function of endothelin B receptor after subarachnoidal hemor-rhage in the rat [J].Exp Biol Med (Maywood),2006,231(6):1064.

[5] 金清东,陈 志,林秋泉,等.蛛网膜下腔出血动物模型的研究进展[J].现代医药卫生,2007,23(12):1009.

收稿日期:2007-12-11

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