RNA干扰下调CD98hc表达对胶质瘤细胞U251增殖、转移的影响

时间:2022-08-15 02:35:44

RNA干扰下调CD98hc表达对胶质瘤细胞U251增殖、转移的影响

[摘要] 目的 观察下调cd98hc对胶质瘤U251细胞体外增殖、迁移及侵袭的影响。 方法 应用sirna技术干涉U251胶质瘤细胞CD98hc的表达,筛选并获得CD98hc低表达的U251细胞株(U251KD)及阴性对照细胞(U251NC)。流式细胞技术及Western blot鉴定CD98hc的表达下调情况。应用CCK-8细胞增殖实验检测两组细胞增殖;细胞划痕实验及Transwell小室分别检测两组细胞的迁移及侵袭能力;Western blot检测MMP-2、MMP-9的表达。 结果 与阴性对照U251NC组相比,U251KD细胞中CD98hc水平明显下调(P < 0.01),U251KD细胞的增殖和迁移、侵袭能力均显著受抑(P < 0.05),MMP-2、MMP-9的表达也明显降低(P < 0.01)。 结论 下调CD98hc的表达能够明显抑制胶质瘤U251细胞的体外增殖、迁移及侵袭,其机制可能与MMP-2、MMP-9的下调相关。CD98hc分子可作为胶质瘤治疗的一个潜在靶点。

[关键词] CD98分子;胶质瘤;细胞增殖;细胞侵袭

[中图分类号] R730.23 [文献标识码] A [文章编号] 1673-7210(2016)06(b)-0016-05

神经胶质瘤是好发于成人的一种原发性中枢神经系统肿瘤,50%以上的胶质瘤具有分化程度低、侵袭性强、恶性程度高等特点,临床预后较差[1]。临床胶质瘤的治疗多采用手术并辅以放/化疗的综合治疗方式[2],但患者的生存期仍然较短,效果并不理想[3-4],这主要与胶质瘤复杂的发病机制密切相关。多项研究表明,神经胶质瘤的发生发展是一个涉及多基因、多阶段的过程,因此,阐明其发病的分子机制对胶质瘤的治疗具有重要的指导意义。

CD98分子是由CD98重链(CD98hc、4F2hc)与LAT-1、LAT-2等6种轻链中的一条组成的异源二聚体,在细胞氨基酸代谢转运方面发挥着重要的作用[5]。越来越多的研究发现,CD98hc在多种肿瘤细胞表面呈高表达,与肿瘤的发生发展关系密切[6]。在人脑胶质瘤中CD98hc的表达明显高于正常脑组织,并且其表达水平与胶质瘤的病理分级呈显著正相关[7]。但是CD98hc在胶质瘤发生发展中的具体作用机制目前尚未见报道。本文主要通过干涉CD98hc的表达,观察其对胶质瘤细胞系u251增殖和运动能力的影响,并初步探讨其机制,旨在为胶质瘤的基因治疗提供一定的理论依据。

1 材料与方法

1.1 材料

U251细胞株购自中科院细胞库;DMEM(美国Hyclone);小牛血清(四季青);RIPA细胞裂解液、BCA蛋白定量试剂盒及CCK-8试剂盒(碧云天生物技术研究所);Transwell小室(Corning公司);Lipofectamine 2000(Invitrogen公司);鼠抗CD98单克隆抗体、鼠抗MMP-2抗体、兔抗MMP-9抗体(Abcam);抗人β-actin小鼠单克隆抗(Santa Cruz);羊抗鼠FITC(中杉公司);二抗(Pierce公司)。

1.2 方法

1.2.1 细胞培养 U251细胞培养于含10% FBS、2% L-谷氨酰胺的DMEM高糖培养基中,置于37℃、5%CO2培养箱,适时更换培养基和传代。实验时选取处于对数生长期的细胞。

1.2.2 U251细胞转染 取对数生长期的U251细胞2×105接种于6孔板中,继续培养,待融合度达80%左右,按质粒(μg)∶脂质体(μL)=1∶2的比例转染CD98hc-siRNA、空白对照(control siRNA),具体操作按照Lipofectamine 2000试剂盒说明书进行,分别获得CD98下调的U251KD细胞株和阴性对照U251NC细胞株。培养48 h后收集细胞进行Western blot和流式细胞技术鉴定,鉴定成功后用于后续实验。

1.2.3 Western blot检测 收集待检测细胞,RIPA裂解提取蛋白,BCA蛋白定量后进行10% SDS-PAGE凝胶电泳,湿转至PVDF膜后,应用5%脱脂牛奶封闭1 h,一抗4℃孵育过夜,PBST洗膜3次后加入二抗,室温孵育1 h后,洗膜3次,化学发光,采集图像。

1.2.4 流式细胞染色 收集转染后的U251细胞,制成细胞混悬液,浓度为1×106/mL,4%多聚甲醛固定20 min后,1%BSA室温封闭20 min,加入鼠抗CD98单抗室温孵育1 h,PBS洗3次后加入羊抗鼠FITC室温1 h,PBS漂洗后上机检测。

1.2.5 CCK-8检测细胞增殖 收集转染后的U251细胞,每孔1×104个细胞接种于96孔板中,于固定时间点(6、12、24、48、72、96 h)向每孔中分别加入10 μL CCK-8溶液孵育,1 h后用酶标仪测定在450 nm处的吸光度。

1.2.6 细胞划痕实验 收集细胞,在12孔板中每孔加入4×105个细胞。待细胞贴壁后用中枪头比着直尺呈45°划痕。用无血清培养基洗细胞2次,去除划下的细胞,加入无血清培养基,分别在培养的0、12、24 h拍照。计算2次拍照间的距离差,实验重复3次,计算平均值。

1.2.7 Transwell侵袭实验 无血清培养基按1∶4稀释Matrigel胶,加入小室上室,每个小室100 μL,37℃孵育4 h。加入细胞前先水化基底膜。消化细胞并计数,浓度为1×105/mL,加入100 μL于小室上室。在小室的下室24孔板内加入400 μL含10%血清的培养基,37℃,5%CO2培养24 h。每组设3个平行复孔。取出小室,弃去培养基,置于未用过的24孔中,95%乙醇固定后加入DAPI染色10 min,10×荧光显微镜下观察,拍照。计数5个视野的穿膜细胞数,实验重复3次,计算平均值。

1.3 统计学方法

采用SPSS 17.0统计学软件进行数据分析,计量资料数据用均数±标准差(x±s)表示,多组间比较采用单因素方差分析,组间两两比较采用Student's t检验,以P < 0.05为差异有统计学意义。

2 结果

2.1 U251细胞表面CD98hc的下调表达

Western blot结果显示,U251KD细胞CD98的表达明显下调,蛋白抑制率达56.9%,显著低于阴性对照U251NC细胞(P < 0.001),见图1A;同时,流式结果显示,U251KD细胞表面CD98表达量亦明显低于U251NC细胞(P < 0.001),见图1B。

2.2 下调表达CD98分子抑制U251细胞增殖

应用CCK-8法检测CD98分子对U251细胞的增殖影响,结果发现,U251KD细胞增殖活性与U251NC细胞相比,24 h后两组细胞OD值差异有统计学意义(P < 0.05),见图2。提示CD98分子可显著抑制U251细胞的体外增殖。

2.3 下调表达CD98分子抑制U251细胞迁移

体外细胞划痕实验结果表明,下调CD98的表达后,U251细胞的迁移运动能力明显受抑。U251KD细胞与U251NC细胞相比,在12 h即表现出显著的迁移抑制(P < 0.05),24 h作用更加明显(P < 0.001)。见图3。

2.4 下调表达CD98分子抑制U251细胞侵袭

分别将U251KD细胞与U251NC细胞接种于Transwell小室上室培养24 h,DAPI染色后于显微镜下观察,发现两组均有细胞穿过小室滤膜。U251KD细胞与U251NC细胞相比,穿膜细胞数明显减少,差异有高度统计学意义(P < 0.01)。提示下调U251细胞的CD98表达对U251细胞的侵袭能力存在一定的抑制作用。见图4。

2.5 下调CD98分子抑制U251细胞MMP-2、MMP-9的表达

进一步收集转染后的U251NC和U251KD细胞,检测其MMP-2和MMP-9表达,结果显示,下调CD98后,胶质瘤细胞MMP-2和MMP-9的表达均明显下调,与阴性对照U251NC细胞相比,差异有高度统计学意义(P < 0.01)。见图5。

3 讨论

CD98分子最早被认为是一种淋巴细胞表面抗原,与T细胞和B细胞的激活相关[8]。后来研究发现,CD98广泛表达于除血小板以外的所有细胞,并且在处于增殖状态的正常组织中呈高表达。对增殖活跃的肿瘤细胞而言,CD98分子已被证实高表达于肺癌、乳腺癌、肝癌等多种肿瘤组织中,这种高表达与患者的病情及预后密切相关[9-11]。在胶质瘤中,也有类似的研究,这些研究提示CD98hc高表达于脑胶质瘤中,而瘤旁组织则无明显表达,并且其高表达与胶质瘤的病理分级和恶性增殖显著相关[12-13]。本研究发现,抑制CD98hc的表达可以明显抑制U251细胞的增殖,这和在其他肿瘤上的研究结果基本一致[14-16],提示CD98hc在人脑胶质瘤发生和发展中起着重要作用,可作为肿瘤治疗的一个潜在靶点。

侵袭性生长是脑胶质瘤细胞的一个非常显著的特点,这也成为胶质瘤治疗中需要克服的一个瓶颈。本研究发现,下调CD98分子可以显著降低U251细胞的迁移及侵袭能力,进一步分析其具体机制发现,CD98的下调可引起基质金属蛋白酶(MMP)-2和MMP-9的表达降低,提示CD98分子在胶质瘤的侵袭扩散中起到了非常重要的作用。有研究表明,随着胶质瘤恶性程度的增加,MMP-2的表达及活性也明显增加,并与胶质瘤的侵袭直接相关[17]。然而CD98分子如何参与MMPs的表达调控目前还不清楚,笔者推测可能与CD147分子有一定的联系。CD147分子又称为细胞外基质金属蛋白酶诱导剂,可以在肿瘤微环境中诱导MMPs的分泌,从而促进肿瘤侵袭和转移[18]。有文献报道,CD147和CD98hc可能作为一个分子复合体而存在于胞膜表面相互作用,组成CD147-CD98hc复合体进一步调节细胞的糖和氨基酸代谢,从而发挥对细胞的调控作用[19-20]。CD98分子可能通过调控CD147分子的功能进而影响MMPs的分泌,参与胶质瘤细胞的侵袭扩散,至于其具体机制有待于进一步研究。

综上所述,下调胶质瘤U251细胞CD98分子的表达可明显抑制胶质瘤细胞的增殖、迁移和侵袭,其抑制胶质瘤细胞侵袭的机制可能与MMP-2和MMP-9的表达减少有关。本文从细胞水平证实了CD98分子在脑胶质瘤发生发展中的作用,为以CD98为靶点的胶质瘤基因治疗提供了初步实验依据。

[参考文献]

[1] Morgan LL. The epidemiology of glioma in adults:a "state of the science" review [J]. Neuro Oncol,2015,17(4):623-624.

[2] Cloughesy TF,Cavenee WK,Mischel PS. Glioblastoma: from molecular pathology to targeted treatment [J]. Annu Rev Pathol,2014,9(1):1-25.

[3] Wen PY,Reardon DA. Neuro-oncology in 2015:Progress in glioma diagnosis, classification and treatment [J]. Nat Rev Neurol,2016,12(2):69-70.

[4] Krishnatry R,Zhukova N,Guerreiro SA,et al. Clinical and treatment factors determining long-term outcomes forsurvivors of childhood low-grade glioma:A population-based study [J]. Cancer,2016,122(8):1261-1269.

[5] Rosell A,Meury M,Alvarez-Marimon E,et al. Structural bases for the interaction and stabilization of the human amino acid transporter LAT2 with its ancillary protein 4F2hc [J]. Proc Natl Acad Sci U S A,2014,111(8):2966-2971.

[6] Theodosakis N,Micevic G,Sharma R,et al. Integrative discovery of CD98 as a Melanoma Biomarker [J]. Pigment Cell Melanoma Res,2016,29(3):385-387.

[7] Haining Z,Kawai N,Miyake K,et al. Relation of LAT1/4F2hc expression with pathological grade,proliferation and angiogenesis in human gliomas [J]. BMC Clin Pathol,2012,12(1):4.

[8] Haynes BF. Human T lymphocyte antigens as defined by monoclonal antibodies [J]. Immunol Rev,1981,57(1):127-161.

[9] Wu B,Wang Y,Yang XM,et al. Basigin-mediated redistribution of CD98 promotes cell spreading and tumorigenicity in hepatocellular carcinoma [J]. J Exp Clin Cancer Res,2015,34(10):110.

[10] Furuya M,Horiguchi J,Nakajima H,et al. Correlation of L-type amino acid transporter 1 and CD98 expression with triple negative breast cancer prognosis [J]. Cancer Sci,2012,103(2):382-389.

[11] Guo X,Li H,Fei F,et al. Genetic variations in SLC3A2/CD98 gene as prognosis predictors in non-small cell lung cancer [J]. Mol Carcinog,2015,54(Suppl 1):E52-E60.

[12] 甄海宁,河井信行,冈田真树,等.4F2hc表达与人脑胶质瘤病理级别增殖和血管形成的关系[J].中国肿瘤临床,2012,39(16):1161-1164.

[13] Ganapathy V,Thangaraju M,Prasad PD. Nutrient transporters in cancer: relevance to Warburg hypothesis and beyond [J]. Pharmacol Ther,2009,121(1):29-40.

[14] Fogelstrand P,Feral CC,Zargham R,et al. Dependence of proliferative vascular smooth muscle cells on CD98hc (4F2hc, SLC3A2)[J]. J Exp Med,2009,206(11):2397-2406.

[15] Cantor J,Slepak M,Ege N,et al. Loss of T cell CD98 H chain specifically ablates T cell clonal expansion and protects from autoimmunity [J]. J Immunol,2011,187(2):851-860.

[16] Santiago-Gomez A,Barrasa JI,Olmo N,et al. 4F2hc-silencing impairs tumorigenicity of HeLa cells via modulation of galectin-3 and beta-catenin signaling,and MMP-2 expression [J]. Biochim Biophys Acta,2013,1833(9):2045-2056.

[17] 徐利民,陆永建,柳浩然.EMMPRIN基因表达对胶质瘤U251细胞增殖、凋亡的影响[J].武警医学,2012,23(3):223-226.

[18] Toole BP. Emmprin(CD147),a cell surface regulator of matrix metalloproteinase production and function [J]. Curr Top Dev Biol,2003,54(1):371-389.

[19] Guo N,Zhang K,Lv M,et al. CD147 and CD98 complex-mediated homotypic aggregation attenuates the CypA-induced chemotactic effect on Jurkat T cells[J]. Mol Immunol,2015,63(2):253-263.

[20] Xu D,Hemler ME. Metabolic activation-related CD147-CD98 complex [J]. Mol Cell Proteomics,2005,4(8):1061-1071.

(收稿日期:2016-03-11 本文编辑:程 铭)

上一篇:静脉留置针连接三通接头在门诊无痛胃肠镜检查... 下一篇:核桃叶提取液对吲哚美辛诱导胃黏膜损伤的实验...