升降散对DM大鼠双歧杆菌、大肠杆菌及IL―6的影响

【摘要】目的：观察升降散对糖尿病大鼠双歧杆菌、大肠杆菌及IL-6的影响，探讨其作用机制。方法：取70只SD雄性大鼠，随机取10只作为正常对照组，余60只用高脂饲料喂养配合小剂量链脲佐菌素诱导建立糖尿病模型，取成模大鼠50只分为模型对照组、拜糖平组、升降散低剂量组、升降散中剂量组和升降散高剂量组，共分6组，每组10只，各组按相应药物剂量干预6周后，每组取8只大鼠样本采用Elisa法检测IL-6、INS，Realtime PCR技术进行细菌定量测定。结果：治疗前，模型对照组、拜糖平组、升降散低、中、高三个剂量组较正常对照组空腹血糖（FBG）、IL-6、INS及大肠杆菌数量均明显升高，但双歧杆菌数量明显减少；治疗前后，正常对照组及模型对照组组内各指标无明显变化。治疗后，拜糖平组及升降散低、中、高剂量FBG在2周、4周及6周均逐渐降低，且高于同时间正常对照M，低于同时间模型对照组（P

【关键词】升降散；糖尿病；双歧杆菌；大肠杆菌；IL-6 大鼠

【中图分类号】R285【文献标志码】 A【文章编号】1007-8517（2017）08-0035-04

Abstract：Objective To observe the effect and the mechanism of Chinese herbal medicine on Bifidobacterium， Escherichia coli and IL-6 in diabetic rats Methods 70 SD male rats， 10 rats as normal control group， only more than 60 high fat diet combined with low dose of streptozotocin induced diabetic model was established， the model 50 rats were divided into model group， Bai Tangping group， Shengjiangsan low dose group， middle dose group Shengjiangsan Shengjiangsan and high dose groups were divided into 6 groups， 10 rats in each group， each group according to the corresponding dose of drug for 6 weeks， 8 rats from each group of samples was detected by Elisa IL-6， INS Realtime， PCR technology for quantitative determination of bacteria Results Before treatment， model group and acarbose group， Shengjiangsan low， medium and high dose groups compared with normal control group， fasting blood glucose （FBG）， IL-6， INS and the number of Escherichia coli were significantly increased， but the number of bifidobacteria was significantly reduced； before and after the treatment， the normal control group and model control group each index in the group had no obvious change After treatment， acarbose Shengjiangsan group and low， middle and high dose of FBG in 2 weeks， 4 weeks and 6 weeks were gradually decreased， and higher than that of the normal control group， compared with model control group （P

Keywords：Shengjiangsan； DM rats； bifidobacterium； e Coli； IL-6

随着大量实验研究证实肠道菌群与肥胖、糖尿病等代谢性疾病密切相关，肠道菌群已成为代谢性疾病防控的新方向。研究表明，肠道菌群失调可诱发慢性炎症进而诱发胰岛素抵抗，从而导致糖尿病发生，但其机制尚未十分明确。Zhang等[1]运用16Sr DNA高通量测序方法，发现机体代谢参数和菌群多样性两者间有明显的关联性。此为肠道菌群的结构可调控糖尿病的发病机制研究提供了证据。现有关于肠道菌群失调导致肥胖及2型糖尿病发生的研究，多数观点集中认为肠道乳酸菌、双歧杆菌等益生菌的减少与糖耐量异常密切相关[2-4]。中药升降散为临床调理脾胃气机的常用治疗大法，前期研究证实，其改善糖尿病的症状及降低血糖效果颇佳。本研究通过制作DM大鼠模型，观察升降散对DM大鼠肠道菌群（大肠杆菌、双歧杆菌）结构变化及相关炎症因子（IL-6）的影响，探讨其部分作用机制，为升清降浊法调整肠道菌群、改善糖尿病炎症状态、改善糖尿病临床预后提供理论依据。

1仪器与材料

11动物SD雄性大鼠70只，SPF级，体重140～160g，由郑州大学动物实验中心提供，合格证号：41003100002297。清洁环境中饲养，室内温度维持在25℃左右，自由摄水。

12药品与试剂升降散药物组成（僵蚕10g，蝉蜕6g，姜黄6g，大黄3g），药物购自河南省中医院，由三九颗粒制药提供，颗粒剂总重量为7g；拜糖平/阿卡波糖片（德国拜耳公司）；链脲佐菌素（STZ）（美国Sigma公司）；SYBR Green/Flourescein qPCR Master Mix（2X））Fermentas公司）；Ex TaqTM、DL2000 DNA Marker、DL15000 DNA Marker（TAKARA公司）；引物合成，擎科新业生物技术有限公司提供；基因组DNA提取试剂盒（北京天根生化科技有限公司，批号：DP328）；大鼠IL-6 Elisa检测试剂盒（河南天驰生物有限公司，批号：CK-E30646R）。

13仪器血糖测定仪：稳豪倍优型血糖仪（强生医疗器械有限公司）；实时荧光定量PCR仪、荧光定量PCR管（ABI）；水平电泳仪、紫外分析仪（北京君意东方电泳设备有限公司）。

2方法

21动物造模70只大鼠普通饲料适应性喂养1周后，随机取10只作为正常对照组，标准饲料喂养，余60只予高脂饲料喂养至满8周后，腹腔注射STZ30mg/kg，正常组对照组注射等体积01mol/L无菌枸橼酸缓冲液。72h后测大鼠空腹血糖（禁食8～10h），空腹血糖≥111mmol/L认为糖尿病大鼠造模成功[5]。剔除未成模及死亡大鼠10只。

22分组与给药50只成模大鼠按随机数字表法分为模型对照组、拜糖平组、升降散高、中、低剂量组及未造模的正常对照组，共6组，每组10只。拜糖平组每日灌胃70 mg・kg-1；升降散低、中、高剂量组，每日灌胃升降散（0753，1506，3012 g・kg-1），模型对照组与正常组每日灌胃等量生理盐水。每3天称体重1次，根据体重调整给药量。药物干预6周后进行各指标的观察检测。

23标本采集与指标检测

231一般情况治疗期间观察大鼠精神状态、皮毛色泽、饮水量、尿量、体重等。

232生化指标检测每周血糖仪测空腹血糖值；治疗第6周末，4%的水合氯醛动物麻醉后取血标本，每组取8只样本进行ELISA法检测血清IL-6、INS。

233Realtime PCR技术测定双歧杆菌、大肠杆菌每组取8只大鼠新鲜粪便样本进行检测，按试剂盒说明书每只大鼠取02g新鲜粪便进行基因组DNA提取，以其为模板做PCR扩增，扩增片段引物Ecoli （95bp）：Ecoli F：CATGCCGCGTGTATGAAGAA，Ecoli R：CGGGTAACGTCAATGAGCAAA ；Bifidobacterium genus （398bp）：Bifi F：CAAGGGCATCTCCGTCA， Bifi R：GCGTTCAGGGTCTTCTCC。在PCR反应体系中，加入SYBR荧光染料，利用荧光信号的变化实时检测PCR扩增反应中每一个循环扩增产物量的变化，通过Ct值和标准曲线的分析对起始模板进行定量分析。

24统计学方法采用SPSS 170软件，计量数据采用（x±s）表示，组内比较采用t检验，多组间比较采用单因素方差分析，P

3结果

31一般情况观察正常组大鼠精神状况良好，反应灵敏，饮食及尿量正常，毛色有光泽，体重稳定增加。其余各组注射STZ后明显消瘦，并出现多饮、多食、多尿、精神萎靡，毛色发黄o关泽等症状。

32各组大鼠不同时间点FBG的比较治疗前后，正常对照组及模型对照组组内血糖无明显变化，升降散低、中、高剂量组及拜糖平组血糖在2周、4周及6周逐渐降低，且均高于同时间正常对照组，低于同时间模型对照组，差异均有统计学意义（P

33各组大鼠治疗前后IL-6、INS的比较治疗前，模型对照组、拜糖平组及升降散低、中、高剂量组较正常组IL-6、INS水平均明显升高（P

34双歧杆菌、大肠杆菌Realtime PCR定量分析治疗前，模型对照组、拜糖平组及升降散低、中、高剂量组较正常组双歧杆菌明显降低、大肠杆菌量明显升高（P

4讨论

肠道菌群做为人体最大微生态系统，参与并影响着人体物质与能量代谢，目前多项研究表明，肠道菌群与糖尿病的发生发展密切相关，其作用机制可能为[6-9]：首先，肠道细菌可提高能量转化效率，能将食物中宿主自身不能分解的碳水化合转化为代谢终产物―短链脂肪酸（SC-FAs），肠道菌群失调可诱发机体内SCFAs水平和构成发生异常，如此肠道抗炎症反应能力、脑肠肽激素分泌功能等受到影响，会引起胰岛细胞功能受损、胰岛素抵抗的发生；其次，高脂饮食可改变肠道细菌的环境，肠道菌群失调导致革兰阴性菌比例的增多、肠壁通透性增加或者肠道菌群移位，通过产生和吸收更多的 LPS，激活胰岛的低度慢性炎症，炎症可能通过多种途径导致胰岛β细胞结构受损与功能障碍，促进β细胞凋亡。同时，2型糖尿病本身亦会导致肠道菌群紊乱，削弱肠道屏障作用，刺激机体免疫系统所产生的IL-6、TNF-α等细胞因子，促使胰岛细胞功能进一步受损，如此形成恶性循环。因此，通过调控肠道菌群的组成或许能为糖尿病的治疗提供新策略。

中医强调以整体辨证论治，对此单方面的研究甚少，对其病因病机的研究散见于消渴病的文献中。总结前人对其病因的认识大致为禀赋虚弱、饮食失节、情致失调及劳欲过度，其病机以阴虚燥热为主。但疾病是发展的，病因病机亦是发展的。刘爱华教授基于多年对DM临床观察和总结的基础上，应用中医病因病机学基本理论、继承脾胃学家李东垣、国医大师李振华 “升清降浊”学说，并在查阅相关的文献资料，运用类比、归纳、演绎多种方法，经过较严密的逻辑思维过程，创新提出“脾失升清，浊毒下陷”之假说，认为DM的发病与脾胃气机升降失常、痰浊瘀毒逆乱有关，而且认为“脾失升清，浊毒下陷”气机升降是根本。故用升降散，以僵蚕、蝉蜕、姜黄、大黄，共研细末，以黄酒、蜂蜜为引导，蝉蜕、僵蚕升阳中之清阳；片姜黄、制大黄降阴中之浊阴，则杂气之流毒顿消矣。现代药理亦研究证实升降散具有抗炎、抗病毒、抗过敏、解痉，利胆，抗惊厥，调节免疫等功能[10]。

本实验结果显示：治疗前，模型对照组、拜糖平组、升降散低、中、高三个剂量组较正常对照组空腹血糖（FBG）、IL-6、INS及大肠杆菌数量均明显升高，但双歧杆菌数量明显减少；治疗前后，正常对照组及模型对照组组内各指标无明显变化。治疗后，拜糖平组及升降散低、中、高剂量FBG在2周、4周及6周均逐渐降低，且高于同时间正常对照组，低于同时间模型对照组（P

[1]Zhang X，Shen D，Feng Z，et al.Human gut microbiota changes reveal the progression of glucose intolerance [J].PLoS one，2013，8（8）：e71108.

[2]Gills，Mihai P，Robert T，et al. Metagenomic analysis of the human distal gut[J]. Science，2006，312（1355）：1355-1359.

[3]Larsen N，Vogensen FK，van den Berg FW，et al. Gut microbiota in human adults with type 2 diabetes differs from non-diabetic adults[J].PLoS One，2010，5（2）：e 9058.

[4] Rabot S，Membrez M，Bruneau A，et al.Germ-free C57BL/6J mice are resistant to high-fat-diet-induced insulin resistance and have altered cholesterol metabolism [J].FASEB J，2010，24（12）：4948-4959.

[5]魏占英，沈丽，冯晓慧，等. 高脂饲料喂养时间和STZ剂量对建立2型糖尿病大鼠模型的影响[J]. 医学研究杂志，2014（02）：42-46.

[6] Samuel BS，Shaito A，Motoike T，et al. Effects of the gut micorbiota on host adiposity are modulated by the short -chanfatty-acid binding G protror，Gpr41[J].ProcNatl Acad Sci USA，2008，105（43）：16767-16772.

[7] Velagapudi VR，Hezaveh R，Reigstad CS，et al. The gut microbiota modulate shostenergyand lipid metabolism in mice[J].J Lipid Res，2010，51（5）：1101-1112.

[8]Guarner F，Malagelada JR. GUT flora in helth and disease[J].Lancet，2003，361（9356）：512-519.

[9]Lu YC，wc，Ohashi PS. LPS/TLP4 signal transductionpathway[J]. Cytokine，2008，42（7）：145-151.

[10]⑽木，薛燕星，胡东鹏. 升降散的现代药理机制研究进展[J]. 北京中医药，2012（12）：939-943.