DcR3基因在肺癌组织中的表达及临床意义

时间:2022-09-01 04:49:37

DcR3基因在肺癌组织中的表达及临床意义

摘要:目的 检测DcR3基因在肺癌组织中的表达,探讨该基因在肺癌发病中的意义。方法 采用SP免疫组织化学方法检测60例肺癌组织(实验组)及60例正常肺组织(对照组)中DcR3基因的表达水平。结果 在60例肺癌组织中,DcR3基因的阳性表达率分别为68.33%,在60例正常肺组织中,其阳性表达率为45.2%,DcR3基因在两组组织中的表达均有显著性差异(P

关键词:DcR3基因 肺癌 表达

中图分类号:R563 文献标识码:A 文章编号:1005-0515(2013)8-036-02

肺癌是严重危害人类健康的恶性肿瘤,居美国肿瘤死因首位。根据全国疾病监测系统报告,自 1990 年起,中国人群的肺癌死亡率以每年 4.5%的速度上升,估计在未来还会上升的更快。由于肺癌5 年存活率很低,仅为10%~15%[1],所以研究肺癌的发生、发展及治疗已成为当前的一个研究热点,尤其是肺癌发生的分子生物学方面的机制研究成果显著,极大地丰富了对肺癌发生过程的认识。可溶性诱惑受体(decoy receptor 3,DcR3)具有帮助肿瘤的发生,发展和逃避免疫攻击的作用。目前国内外已经检查了许多恶性肿瘤 , 结 果 发 现 了 大 多 数 恶 性 肿 瘤 均 表 达 DcR3基因[2-3-4-5-6]。本实验主要通过测定DcR3基因在肺癌和正常肺组织中的表达,说明DcR3基因在肺癌发生过程中可能起着重要作用,可能作为一个反映肺癌恶性程度的指标。

1 研究对象

选用我院2000年1月至2012年12月间60例肺癌病例,其中男性35例,女性25例,年龄29-79岁,中位年龄56岁,均经手术病理、纤维支气管镜细胞学及组织学诊断明确。其中鳞癌30例,腺癌12例,小细胞癌9例,肺泡细胞癌5例,混合癌2例,大细胞癌2例,均未接受化疗、放疗及其他抗癌治疗。所有病例均进行询问病史、查体、胸片、胸部CT、腹部B超及同位素骨扫描,部分病例进行头颅或腹部CT扫描,根据1997年国际抗癌联盟(UICC)分期标准进行TMN分期。标本经10%福尔马林固定,石蜡包埋。随访时间3-36月。

2 主要试剂

SP免疫组化染色试剂盒,为北京中杉金桥生物技术有限公司产品;抗人DcR3单克隆抗体(mAb)自行制备。

3.实验方法

1将切片依次浸入盛有二甲苯、梯度酒精的玻璃缸中脱蜡后水化(二甲苯Ⅰ30分钟二甲苯Ⅱ15分钟二甲苯Ⅲ15分钟100%乙醇Ⅰ3分钟100%乙醇Ⅱ3分钟95%乙醇3分钟75%乙醇3分钟蒸馏水冲洗lx PBS再洗一次)。

2 3%H2O2(90%1xPBS+10ml 30% H2O2配制)室温孵育10分钟,以消除内源性过氧化物酶的活性,1xPBS冲洗5分钟x2次。

3.将切片置于修复架上,浸入盛有0.01M构椽酸钠缓冲液(PH6.0)的烧杯中,高火加热至90摄氏度后记时2分钟,然后转至解冻10分钟,接着将烧杯端离热源,室温冷却20一30分钟,取出切片,蒸馏水冲洗,1xPBS冲洗5分钟x3次。

4.滴加10%正常羊血清37摄氏度封闭孵育1小时,倾去血清,勿洗以封闭非特异性背景着色。

5滴加抗人DcR3单克隆抗体,4摄氏度孵育过夜。

6第二天从冰箱中取出标本,恢复至室温后1xPBS冲洗5分钟x3次。

7滴加生物素标记的羊抗鼠二抗,37.C孵育1小时,1xPBS冲洗5分钟x3次。

8.滴加辣根过氧化物酶标记的三抗链霉卵白素,37摄氏度孵育1小时,lxPBS冲洗5分钟x3次。

9用新配制(1xPBSlml+微量的DAB+1ūl 30% H2O2)的DAB〔5%v/v)避光显色5-15分钟,于光学显微镜下观察,有信号时可用自来水冲洗终止反应,10%苏木素稍稍衬染(自来水冲洗),1%盐酸一酒精分色(可滴片并直接浸泡在lx PBS里,然后用水冲洗)。

10.逐级酒精脱水,二甲苯透明(75%乙醇3分钟95%乙醇3分钟100%乙醇I 3分钟100%乙醇Ⅱ3分钟二甲苯I 3分钟二甲苯Ⅱ3分钟)。

11.中性树胶加盖玻片封片。

12.加一抗时把对照片用1XPBS代替IA6抗体分别作实验组和对照组对照。

4.结果判定

每例标本选择9个高倍镜视野(40X,向同一方向移动切片,不重复,不重叠,细致观察),按阳性细胞数占视野中总细胞数的百分比3级(一):无阳性着色或阳性细胞数5%0为强阳性"计算阳性率时以(/一)与(0一+)之和为总阳性细胞数。结果判定采用双盲对照法。

5统计学分析

数据采用SPSS17.0统计软件进行统计学分析,用x2检验及等级相关性分析进行数据处理P

6 结果

在60例肺癌组织中,DcR3基因的阳性表达数目为41例,阳性表达率为(41/60)68.33%,在60例正常肺组织中,其阳性表达数目为27例,阳性表达率为45.2%。DcR3基因在两组组织中的表达均有显著性差异(P

7 讨论

肺癌可以分为两大类:(一)非小细胞肺癌。1,鳞状上皮细胞癌(简称鳞癌)包括梭形细胞癌。典型的鳞癌细胞大, 呈多形性,胞浆丰富,有角化倾向,核畸形,染色深,细胞间桥多见,常呈鳞状上皮样排列。分化较好,恶性度较低。2,腺癌,包括腺泡状腺癌、状腺癌、细支气管-肺泡细胞癌、实体癌粘液形成。典型的腺癌呈腺管或状结构,细胞大小比较一致,圆形或椭圆形,胞浆丰富,常含有粘液,核大,色深,常有核仁,核膜比较清楚。3,大细胞癌,包括巨细胞癌、透明细胞癌。细胞较大,大小不一,常呈多角形或不规则形,呈实行巢状排列,常见大片出血性坏死,核大,核仁明显,核分裂象常见,胞浆丰富。4,其他 腺鳞癌、类癌、支气管腺体癌等。(二)小细胞肺癌,包括燕麦细胞型、中间细胞型、复合燕麦细胞型。癌细胞多为类圆形或菱形,胞浆少,类似淋巴细胞。分化差,恶性度最高。DcR3 的表达量与肿瘤的恶性度及组织类型有关。从 DcR3 的作用机制上看,它与肿瘤的发生,肿瘤的免疫逃避具有密切的联系,根据 DcR3 的这种表达特点,我们可已通过对它表达量作出初步的组织类型判断,从而来指导临床的诊断,治疗,预后评价及肿瘤复发。

参考文献:

1.BynleKJ,CoxqSwinsonD.Towardstagemodel for perabel non-small LungCaneer,2001:34:583-89

2 Shi G, Wu Y, Zhang J. Death decoy receptor TR6/DcR3 inhibitsT-cell chemotaxis in vitro and in vivo. J Immunol. 2003 Oct1,171(7):3407-14.

3 Hosoe, S.,Kawaguchi, T.; Naka, Y.; Genomic amplificationof a decoy receptor for Fas ligand (DcR3) in lung cancers at various clinical stages,Lung Cancer Volume: 29, Issue: 1,Supplement 1, September, 2000, 196.

4 Hwang SL, Lin CL, Cheng .Serum concentration of soluble decay receptor 3 in glioma patients before and after surgery. Kaohsiung J Med Sci. 2004 Mar,20(3):124-7.

5. Shi G, Mao J, Yu G. Tumor Vaccine Based on Cell Surface Expression of DcR3/TR6. J Immunol. 2005 Apr 15,174(8):4727-35.

6. Fujita Y, Sakakura C, Shimomura K. Chromosome arm 20qgains and other genomic alterations in esophageal squamous cell C arcinoma, as analyzed by comparative genomic hybridization and

fluorescence in situ hybridization. Hepatogastroenterology. 2003 Nov-Dec,50(54):1857-63.

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