SSR分子标记技术在茄子杂交种子纯度鉴定中的应用

时间:2022-07-28 04:30:50

SSR分子标记技术在茄子杂交种子纯度鉴定中的应用

摘要:利用SSR分子标记技术进行种子纯度鉴定是一种准确快速、简单高效的方法。试验选用100对引物在鄂茄子2号亲本间进行PCR扩增,从中筛选出的3对引物SM17、SM29、SM51在双亲本间能够扩增出差异互补的条带。利用这3对引物对鄂茄子2号杂种一代群体进行纯度鉴定,鉴定结果为97.1%;与同批次种子的田间鉴定结果(96.1%,鉴定地点海南岛)接近,说明应用SSR分子标记技术实施茄子杂种一代种子的纯度鉴定是可行的。

关键词:茄子;SSR分子标记技术;种子纯度;鉴定

中图分类号:S641.1;Q503;S339.3+1 文献标识码:A 文章编号:0439-8114(2013)08-1959-04

种子纯度鉴定是种子质量保证的关键环节,直接影响到作物的产量和品质。传统的种子鉴定方法主要有种子形态鉴定法、幼苗鉴定法和田间小区种植鉴定法[1],这些方法不仅需要较多的土地、劳力与财力,而且很容易受到环境因素的干扰,同时鉴定结果的准确性往往不高[2,3]。简单重复序列(Simple sequence repeat,SSR)是近年来发展起来的一种DNA分子遗传标记技术,该技术采用聚合酶链式反应(Polymerase chain reaction,PCR)完成检测,所需的DNA样品量少,对DNA质量要求也不高,加之SSR呈共显性遗传,可鉴别杂合子与纯合子;并且多态性丰富、重复性好、结果稳定可靠[4-7],因而受到普遍欢迎,应用的农作物种类不断增加。SSR技术既有限制性内切酶片段长度多态性技术(Restriction fragment length polymorphism,RFLP)的稳定性高和共显性强的优点[6,8,9],又比随机扩增的多态性DNA标记技术(Randomly amplifiled polymorphic DNA,RAPD)成本低、技术简单[10],所以在种子纯度鉴定中的应用非常广泛,已在水稻(Oryza sativa L.)[11-13]、小麦(Triticum aestivum L.)[14-20]、玉米(Zea mays L.)[21-25]、棉花(Gossypium spp.)[26-31]、大豆[Glycine max(L.)Merr.][32-35]、油菜(Brassica napus L.)[36,37]、花生(Arachis hypogaea L)[5,38,39]、向日葵(Helianthus annuus L.)[40]、苜蓿(Medicago sativa L.)[41,42]、西瓜[Citrullus lanatus(Thunb.)Matsum. et Nakai.] [43]、甜瓜(Cucumis melo L.)[44]、黄瓜(C. sativus L.)[3,45]、大白菜[B. campestris L. ssp. pekinensis(Lour.)Olsson][46,47]、甘蓝(B. oleracea L. var. capitata L.)[48]、辣椒(Capsicum annuum L.)[49]、 番茄(Solanum lycopersicum L.)[50]、马铃薯(S. tuberosum L.)[51]、莲藕(Nelumbo nucifera Gaertn.)[52]等农作物、蔬菜种子中都有报道。试验通过从美国国立生物技术信息中心(National Center for Biotechnology Information,NCBI)数据库和相关文献报道中筛选合适的SSR引物,完成鄂茄子2号(Solanum melongena L. cv. E- Qiezi No.2)种子纯度的鉴定,以期为准确快速、简单高效的茄子杂交种纯度鉴定提供参考。

1 材料与方法

1.1 材料

1.1.1 植物材料及处理 供试植物材料鄂茄子2号与其母本HLE-1、父本HLE-9均由武汉汉龙种苗有限责任公司提供,采用穴盘播种法育苗,在幼苗出现3~4片真叶时采集叶片,用液氮冷冻后放入冰箱(-70 ℃)内保存备用。

1.1.2 试剂 2×CTAB DNA提取缓冲液由2%CTAB、2%PVP、100 mmol/L Tris-HCl(pH 8.0)、25 mmol/L EDTA、2.0 mol/L NaCl组成;TE由10 mmol/L Tris-HCl、1 mmol/L EDTA组成,用于DNA的溶解及保存,使用时添加RNase A 至终浓度为20 ng/mL;电泳缓冲液10×TBE由Tris 108 g、硼酸55 g、0.5 mol/L EDTA 40 mL加水至1 000 mL组成,工作浓度为0.5×TBE;Taq DNA聚合酶、dNTPs、分子量Marker为宝生物工程(大连)有限公司产品;其他各种化学试剂如氯仿、异戊醇、AgNO3、异丙醇、乙醇、NaAc等均为国产分析纯。引物由南京金斯瑞生物科技有限公司提供,引物编号SM1-SM100。

1.1.3 仪器 主要有2720-PCR仪(美国ABI公司)、FR-980生物电泳图像分析系统(上海复日科技有限公司)、DYY-6C型全自动三恒多用电泳仪(北京市六一仪器厂)、DYCZ-28C垂直电泳槽(北京市六一仪器厂)、SPECORD200型紫外-可见光分光光度计(德国耶拿分析仪器股份公司)、GL21R高速冷冻离心机(上海知正离心机有限公司)、HH-8B数显恒温水浴锅(江苏省金坛市环宇科学仪器厂)、SW-CJ-1A 超净工作台(江苏省吴江市隆聚净化科技有限公司)、DHG-9420A-电热鼓风干燥箱(上海申贤恒温设备厂)等。

1.2 方法

1.2.1 茄子叶片DNA的提取 采用CTAB法[53],随机选取鄂茄子2号F1幼苗150株,父本HLE-9、母本HLE-1各1株;每份材料取0.2 g叶片样,剪碎后放入2 mL EP管内(100 μL 的2×CTAB 加钢珠1颗);在磨样器上将叶片打碎,加入700 μL的 2×CTAB混匀;65 ℃ 水浴1 h,每10 min上、下轻微颠倒一次;加入800 μL氯仿-异戊醇(24∶1,体积比,下同)混匀后于4 ℃、10 000 r/min离心10 min;取上清液于新的EP管中,再加入等体积的氯仿-异戊醇抽提一次;复取上清液于新的EP管中,加入等体积的异丙醇(约500 μL,-20 °C预冷)和1/10体积的3 mmol NaAc(约50 μL),混匀后于-20 ℃沉淀1 h;4 ℃、12 000 r/min离心10 min,弃上清液,收集沉淀并风干;用700 μL 75%的乙醇洗涤沉淀2次,4℃、12 000 r/min离心10 min,弃上清;加入200 μL TE(pH 8.0)溶解沉淀DNA,并加入1 μL 10 mg/mL RNaseA于37 ℃的电热鼓风干燥箱中放置1 h,以去除残留的RNA;用紫外-可见光分光光度计检测DNA浓度,将提取的DNA浓度调至100 ng/μL,置于-20 ℃保存备用。

1.2.2 SSR引物的筛选 ①从NCBI数据库中挑选多态性较高的SSR引物100对[54]。②将引物用灭菌的去离子水溶解至 10 μmol。③PCR扩增,反应体系15 μL,包含1.50 μL 10×PCR Buffer、0.30 μL dNTPs(10 mmol)、0.25 μL Primer F(10 μmol)、0.25 μL Primer R(10 μmol)、0.20 μL Taq DNA聚合酶(相当于2.5 U/μL)、11.50 μL去离子水、1 μL DNA(100 ng/μL)。④PCR反应条件为94 ℃预变性10 min;94 ℃变性40 s,设置温度梯度52~60 ℃,退火30 s,72 ℃延伸1 min,35个循环;72 ℃延伸10 min。⑤PCR反应产物用琼脂糖凝胶预检测其扩增效果,并确定每对引物的最适退火温度。⑥调整好最适退火温度,分别以鄂茄子2号的父本、母本DNA为模板再次进行PCR扩增,聚丙烯酰胺凝胶电泳检测PCR产物,找出能区分父本和母本的特异性引物。

1.2.3 F1代种子纯度检测 用筛选确定的特异引物进行鄂茄子2号F1群体检测(反应体系和条件同上);将扩增后的PCR产物先用琼脂糖凝胶预检测,以确定PCR扩增是否成功;然后将PCR扩增产物进行聚丙烯酰胺凝胶电泳检测,AgNO3染色后拍照。

1.2.4 田间种植纯度鉴定 2011年秋季在海南岛试验基地采用营养钵播种,幼苗5~6片真叶时定植,行株距60 cm×50 cm,鄂茄子2号定植110株,其双亲各定植10株,常规栽培管理。在植株对茄期通过植株和果实特性的调查来比较各方差异,从而进行鄂茄子2号的纯度鉴定。

2 结果与分析

2.1 特异引物的筛选

用100对SSR引物对鄂茄子2号的双亲进行引物筛选,通过聚丙烯酰胺凝胶电泳检测进行扩增,结果见图1。由图1可见,筛选到的引物SM17、SM29、SM51扩增带在父本和母本间出现互补条带,3对引物序列如下:

SM17——F链5′-ATCAATGACACCCAAAACC

CATTT-3′;R链5′-GTTTGAAAACCCAATACAAAT

CCGA-3′。SM29——F链5′-ATTGTGTCGATGAG

ATTTTGGTCA-3′;R链5′ GTTTAGCTACGTTGGTT

TGGTGCTGAA-3′。SM51——F链5′-AGTCCACCA

TGAGTGAGTGAGTGA-3′;R链5′-GTTTACGTGTT

GGGCCTCCAAAATATC-3′。

这个结果说明3对引物可以区分父本和母本,因而可用于鄂茄子2号种子纯度的检测。

2.2 F1种子纯度的检测

提取鄂茄子2号的F1样品DNA,经检测最终获得140份可用样品。用上述3对引物分别进行样品PCR扩增检测,其中引物SM17和SM29纯度鉴定结果一致,因此选用引物SM17进行鄂茄子2号的纯度检测,结果见图2。试验在140份样品中出现了4个同父本的单条带,说明这4株为杂株,剩下的为纯合F1代,因此被鉴定的鄂茄子2号种子纯度为97.1%。

2.3 田间纯度鉴定

在海南岛试验基地种植的鄂茄子2号最后存活植株103株,当茄果达到正常商品果时统一进行性状调查,通过比较株型、叶型、果型、果色、萼片色等表型性状对群体进行纯度鉴定,经检测确定杂株4株,因此计算其纯度检测结果为96.1%,这与SSR技术检测的结果接近,说明SSR技术能够用于茄子F1代种子纯度的快速检测。

3 讨论

试验利用SSR技术实施鄂茄子2号种子纯度的鉴定,结果与田间鉴定结果保持了较好的一致性,说明利用SSR技术替代田间种植观察完成茄子种子纯度的快速检测是可行的,有望克服田间调查周期长、受环境因素干扰较大等问题。

试验在NCBI数据库中下载了100对SSR引物,但从中仅筛选出了3对有用的引物,其利用率相当低;而在同种作物、不同品种间由于亲缘关系较近,SSR表现出来的多态性都较差,因此在种子纯度鉴定中SSR引物筛选的难度还是比较大的。同时,此技术前期开发新的SSR引物费时耗力,并且成本高,使得SSR技术在实际运用中受到了一定的限制。不过随着NCBI数据库的不断扩大和研究者的不断挖掘,更多的SSR位点将被标记出来,进而开发成本也会降低。所以有理由相信SSR技术在种子纯度鉴定方面的应用前景广阔。

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