参附注射液对大鼠全脑缺血再灌注时核因子-κB表达的影响

时间:2022-09-15 07:32:48

参附注射液对大鼠全脑缺血再灌注时核因子-κB表达的影响

【中图分类号】 R977 【文献标识码】 A 【文章编号】1185-1672(2007)-04-0291-03

摘要 目的 探讨参附注射液(Shenfu Injection)对大鼠全脑缺血再灌注时核因子-κB(nuclear factor kappaB ,NF-κB)表达的影响及其治疗作用。方法 采用四血管阻塞的方法,复制出大鼠全脑缺血再灌注模型。采用免疫组化法、原位杂交法和原位末端标记法分别检测假手术组(A组)、全脑缺血再灌注组(B组)、参附注射液治疗组(C组)海马CA1区NF-κB 、肿瘤坏死因子-αmRNA(TNF-αmRNA)及细胞凋亡数的变化。结果 与假手术组比较,全脑缺血再灌注组海马CA1区NF-κB 和TNF-αmRNA 的表达及细胞凋亡数明显增加(P

关键词 参附注射液;全脑缺血再灌注;核因子-κB;肿瘤坏死因子-αmRNA;凋亡

脑缺血再灌注损伤的机制尚未完全阐明,目前,认为缺血再灌注后的炎症反应可能是其重要机制之一。NF-κB是目前发现的与炎症有关的重要转录因子之一,参与多种细胞因子和炎症介质的转录调节。TNF-α是重要的前炎症细胞因子,在脑缺血再灌注的炎症反应中起非常重要的级联放大作用。参附注射液是全国中医医院急诊科(室)必备中成药,它是由红参、附片提取而成,主要有效成分别为人参皂苷和乌头碱,具有回阳救逆、益气固脱的临床作用,在脑缺血再灌注的动物实验中研究发现其具有抗氧化、改善神经功能等作用[1-3],但其是否对细胞因子的上游调节因子--核转录因子有调节作用,目前还不清楚。因此,我们通过观察Wistar大鼠全脑缺血再灌注后NF-κB和TNF-α mRNA表达的变化及参附注射液对其干预的影响,探讨参附注射液对全脑缺血再灌注后NF-κB的影响及其保护作用。

1 材料与方法

1.1 材料 ①动物:Wistar大鼠75只,雌雄不拘,体重250 ~ 300g,由华中科技大学同济医学院实验动物中心提供。②主要试剂和仪器:6%水合氯醛(武汉同济医院药剂科),已酮可可碱注射液(由安徽环球药业股份有限公司提供),兔抗NF-κB P65亚单位多克隆抗体(美国Santa Cruze 公司),链霉亲合素-生物素-酶复合物(SABC)检测试剂盒(武汉Boster公司), IL-1βmRNA原位杂交检测试剂盒(武汉Boster公司),原位检测凋亡细胞试剂盒(德国宝灵曼公司),DAB显色试剂盒(武汉Boster公司)。电热烧灼器(上海医疗器械八厂),光学显微镜(Olympus),HPIAS-1000彩色病理图像分析系统(华中科技大学同济医学院实验医学中心)。

1.2 模型制作及标本采集 采用Pulsinelli等四血管阻塞的方法建立大鼠脑复苏模型。

以6%水合氯醛0.4ml/100g腹腔内注射(ip)麻醉。假手术组(A组)动物只分离第一颈椎两侧横突孔,但不电凝双侧椎动脉,分离双侧颈总动脉但不夹闭;全脑缺血再灌注组(B组)动物电凝双侧椎动脉并分别用无创动脉夹夹闭双侧颈总动脉10min,而后松开动脉夹形成再灌注;参附注射液治疗组(C组)于再灌注时给予参附注射液(5ml/kg)腹腔内注射,后每间隔6h予等量注射;全脑缺血再灌注组(B组)于再灌注时,给予等容量的生理盐水(5ml/kg),后每间隔6h等量注射;实验中保持大鼠体温(37 ± 0.5)℃,未昏迷或缺血后有癫痫、抽搐等并发症大鼠均放弃。分别于再灌注2h, 6h, 12h, 24h和48h 5个时间点(每个时间点5只大鼠)迅速横断大鼠脊髓,取出脑组织,以4%多聚甲醛液固定后,梯度酒精脱水,二甲苯透明,浸蜡,常规石蜡包埋,在脑海马CA1区连续切片,厚度6~8um。

1.3 观察项目及检测方法 ① NF-κB活性测定:用免疫组织化学染色检测;石蜡切片经新鲜配制的3%H2O2溶液灭活内源性过氧化物酶,0.1M PBS洗;加一抗(兔抗小鼠NF-κB P65 亚单位的多克隆抗体,经预定实验定为稀释度1:200),4℃置湿盒过夜,0.1M PBS洗;依次加入二抗(生物素化羊抗兔)和三抗(辣根过氧化物酶标记的链霉亲和素),DAB显色。阳性细胞为光镜下细胞核内出现棕黄色物质。

② TNF-α mRNA的表达:用原位杂交法检测;石蜡切片经新鲜配制的3%H2O2溶液室温处理10分钟,蒸馏水洗;切片上滴加3%柠檬酸新鲜稀释的胃蛋白酶,37℃消化10分钟,蒸馏水洗;每张切片上依次加入20μl的预杂交液和杂交液,置恒温箱杂交,(2~0.5)×SCC梯度处理,滴加封闭液和生物素化鼠抗地高辛,0.5M PBS洗5分钟×4次,再滴加SABC和生物素化过氧化物酶,0.5M PBS洗5分钟×4次,DAB显色。阳性细胞为光镜下胞浆中出现棕黄色物质。

③ 细胞凋亡:用原位末端标记法;切片常规脱蜡逐级酒精至水化;蛋白酶K(15μg/ml),37°C,30min; PBS清洗后滴加原位末端标记法反应液(TDT buffer 8μl, 2mol/l Bio-dUTP 3μl, TDT酶0.4μl, 三水28.6μl), 37°C,2h; 滴加SA复合物,37°C,1h;DAB显色5~20min(镜下监测,显色满意后终止反应);苏木素复染,常规脱水、透明,中性树脂封片,镜下观察。显微镜微尺随机计数5个线性长度1mm的阳性细胞数,取平均值。

1.4 数据处理与统计学分析 光镜观察和定量分析运用HPIAS-1000彩色病理图像分析系统(同济医学院实验中心提供)对免疫组化和原位杂交的切片进行图像分析,分析过程中的所有切片的放大倍数、光源强度均相同。测定阳性细胞的平均光密度值(OD)。所得数据以(x[TX-]±s)表示,SPSS11.5软件处理,多组均数的比较用方差分析。NF-κB与TNF-α mRNA及细胞凋亡数的相关性,采用Pearson相关分析。P < 0.05表示差异有显著性意义。

2 结果

2.1 全脑缺血再灌注后NF-κB活性的变化 全脑缺血再灌注后海马CA1区NF-κB的活性于再灌注2h即明显升高(P

2.2 全脑缺血再灌注后TNF-α mRNA表达的变化 全脑缺血再灌后海马CA1区TNF-α mRNA的表达在再灌注2h即明显升高(P< 0.01),12h达到高峰,其后高峰逐渐下移,但在所观察的时间里,与假手术组比较差异均有显著性意义(P< 0.01)。在各对应时间点参附注射液可明显降低TNF-α mRNA的表达(P < 0.01)。见表2。

2.3 全脑缺血再灌注后细胞凋亡数的变化 全脑缺血再灌注后细胞凋亡数随再灌注时间的延长而逐渐增多(P < 0.01), 在各对应时间点参附注射液可明显减少再灌注后的细胞凋亡数(P < 0.01)。见表3。

3 讨论

炎症反应的激活是脑缺血再灌注损伤的重要机制。本研究以四血管阻塞的方法,复制出大鼠全脑缺血再灌注模型。大量研究表明,脑缺血再灌注可激活炎症反应,再灌注的炎症反应促进了继发性的脑损害,是脑再灌注损伤的主要原因之一。NF-κB作为一种普遍存在的转录因子,是多种信号转导途径的汇聚点,在调节脑缺血再灌注炎症反应的基因中起中心环节作用。脑缺血再灌注可导致NF-κB的激活在许多研究中都已得到证实。Berti R等[4]用逆转录聚合酶链式反应(RT-PCR)的方法检测脑缺血再灌注后NF-κB的活性,发现在3h、6h、12h、24h和72h五个再灌注时间点NF-κB的活性均明显增高。Liu SJ等[5]用凝胶电泳迁移分析实验(EMSA)发现脑缺血再灌注0.5h后NF-κB的活性即明显升高,6h达到高峰,24h降到1h的水平。本实验发现,NF-κB的表达在2h即明显升高,6h达到高峰,后逐渐下降,但直至48h仍明显高于假手术组,与上述研究结果相符。激活后的NF-κB可高效诱导多种细胞因子、粘附分子和趋化因子等的表达,同时对参与炎症反应放大与延续(即级联瀑布效应)的多种酶的基因表达也具有重要的调控作用[6]。TNF-α是NF-κB介导产生的一种重要的细胞因子,它可通过多种途径造成组织和细胞损害:使白细胞浸润,血小板粘附内皮细胞,激活诱导型一氧化氮合酶(iNOS)通路产生过量一氧化氮(NO)等。Lavine等[7]用多克隆兔抗鼠中和抗体研究其对脑缺血再灌注损伤的作用,结果发现,抗TNF-α抗体可使局灶性脑损伤皮质梗死面积缩小71%,皮质下梗死面积缩小58%,并增加再灌注后脑血流量,特别是缺血中心区的脑血流量,促进神经功能恢复。本实验发现,全脑缺血再灌注时NF-κB活性与TNF-αmRNA表达均明显增加,细胞凋亡数也明显增加,说明NF-κB和TNF-αmRNA参与了细胞凋亡的发生,与Hickenbottom等[8]报道的相符。

因为,NF-κB是脑缺血再灌注后炎症反应的中心环节,所以拮抗NF-κB的活化,可能起到有效的抗炎效果,从而发挥脑保护作用。Carroll JE等[9]发现N-乙酰半胱氨酸(N-acetylcysteine, NAC),一种抗氧化剂既能明显地降低NF-κB的表达,也能有效减少脑梗死的面积。本组结果表明,参附注射液可减少全脑缺血再灌注时NF-κB在细胞核内的表达,并可在转录水平上抑制TNF-α mRNA的表达。结果说明,参附注射液在脑缺血再灌注治疗过程中可能通过抑制NF-κB的活化而抑制炎症介质如TNF-α的表达,从而对全脑缺血再灌注损伤起治疗作用。至于,参附注射液能否通过抑制NF-κB的活性进而抑制其它重要的炎症细胞因子如白介素-1β(IL-1β)、白介素-6(IL-6)和白介素-8(IL-8)等的表达,需进一步的实验证实。

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