毛细管电泳法检测髓过氧化物酶在急性白血病中的表达

时间:2022-06-15 12:16:20

毛细管电泳法检测髓过氧化物酶在急性白血病中的表达

【摘要】 目的 研究髓过氧化物酶(MPO)在各类型急性非淋巴细胞白血病(ANLL)中表达的差异,探讨MPO表达的定量检测在ANLL分型诊断中的意义。方法 采用毛细管电泳(CE)电化学检测法检测36例ANLL患者及30例正常骨髓单个核细胞(BMMNC)中MPO表达。结果 MPO在ANLL中的表达显著高于其在正常对照中的表达(P

【关键词】 急性白血病;髓过氧化物酶;毛细管电泳

白血病(leukemia)是累及造血干细胞的造血系统恶性肿瘤。由于白血病亚型不同,诊断标准也有不同,治疗方案及预后亦不尽相同。所以白血病的分型诊断在临床工作中具有重要的指导意义。髓过氧化物酶(myeloperoxidase,MPO)被认为是髓系特征中最具特异性的标志,在各型白血病的分型诊断中具有重要意义。目前通过细胞化学染色、流式细胞术[1,2]或电镜[3]对MPO的检测及应用Northen、RTPCR等技术对MPOmRNA的检测已有诸多报道[46]。但以上均为定性检测,对MPO的定量检测尚未见文献报道。本研究采用毛细管电泳法 ( capillary electrophoresis,CE)定量检测MPO在不同类型ANLL中的表达,力争为MPO的检测找到一种更为灵敏的方法。

1 材料和方法

1.1 临床资料

36例初发及复发急性非淋巴细胞白血病(acute nonlymphocytic leukemia,ANLL)患者均来自我院2005年6月至2006年1月门诊及住院病人,其中FAB分类M1 4例、M2 7例、M3 9例、M4 6例、M5 8例和M6 2例,男19例,女17例,年龄15-70岁。全部病例均与化疗前采集骨髓制备标本,并常规进行细胞化学染色。对照组30人,男17人,女13人,年龄22-34岁,均为健康 体检者,经询问病史、体检、实验室及影像学检查无异常者。

1.2 试剂及主要仪器

PBS缓冲液(pH=7.4,武汉博士德生物工程有限公司);淋巴细胞分离液(密度=1.077,济南爱博有限公司);过氧化氢(H2O2,含量30%,分析纯,江苏徐州试剂二厂,徐州,江苏);氢醌(H2Q,分析纯,中国医药集团上海化学试剂公司);辣根过氧化物酶(HRP,活性>250 u/mg,上海丽珠东风生物技术有限公司);弹性石英毛细管(内径25 μm,外径375 μm,河北永年光导纤维厂,河北);碳纤维(直径6 μm,山东大学碳纤维研究中心,山东);10412普通台式离心机(上海手术器械厂);高压电源(9323HVPS,北京市新技术应用研究所,北京);CHI化学分析仪(CHI800型,CHI仪器公司,Austin,TX,USA);微型电解池(自制);三电极体系:碳纤维束微盘电极(工作电极),铂丝电极(辅助电极),饱和甘汞电极(SCE,参比电极);781型磁力加热搅拌器(上海南汇电讯器材厂);超声清洗机(Branson200型,中美合资必能信超有限公司,上海)。

1.3 实验方法 单个核细胞的分离:所有病例均在无菌条件下抽取骨髓2 ml注入EDTA抗凝试管中,加入4 mlPBS(pH7.4)缓冲液稀释。采用淋巴细胞分离液密度梯度离心法分离单个核细胞。分离好的单个核细胞中加入2 ml PBS液,混匀,制成悬浮液,用细胞计数器计数并求出细胞的密度。

细胞提取液的制备:采用冷冻复融法和超声波溶膜法。将已计数的1 ml在PBS溶液中的细胞悬浮液放到20 ℃冷冻,在37 ℃融化后,置于冰浴中在超声波中溶膜,得到细胞提取液。在实验时,直接将细胞提取液用PBS稀释一定倍数后使用。

细胞提取液中MPO的测定采用毛细管电泳电化学检测法,实验中以PBS为电泳缓冲液。将细胞提取液在5.0 kV进样10 s后,在20 kV的电压下运行60 s。再在毛细管中与底物氢醌(H2Q)和过氧化氢(H2O2)柱上孵育10 min,H2Q和H2O2与MPO发生催化反应,反应方程式示于式[1]。生成的苯醌(BQ)又随着压力向检测端移动,到达检测器时,用碳纤维盘束电极检测。在电极上的反应示于式[2]。

H2Q+H2O2MPOBQ+2H2O(1)

BQ+2H++2e-H2Q(2)

由于过氧化物酶催化底物的反应为专一反应,电化学检测到的是BQ,所以电泳峰便对应于细胞提取液中的MPO活性。细胞提取液中MPO的活性是根据已知的辣根过氧化物酶(horseradishperoxidase,HRP)的标准曲线定量的。不同浓度的标准HRP溶液在相同检测条件下进行毛细管电泳电化学检测,可以得到HRP的标准曲线。由于MPO和HRP都是过氧化物酶,在催化过氧化物的性能以及活性的表征和测量方面是相同的。而酶的活性大小,是用酶的活性单位(u)来度量。即使酶的来源不同,其活性测定方法是相同的,因为它们都是转化相同的过氧化物(底物)。所以可以用标准HRP的活性定量MPO的活性。

根据多次测定细胞提取液的结果计算得到细胞提取液中MPO的平均活性浓度(u/ml),再根据细胞悬浮液中细胞浓度(cell/ml),可以计算出每个细胞中MPO的平均含量(u)。

1.4 统计学处理 用SPSS12.0统计软件将所有检测数据及病例相关资料建立数据库,对照组与ANLL组间的比较采用两样本均数的t检验;ANLL各亚型间的比较采用方差分析F检验,(P

2 结果

MPO在ANLL中的表达结果及其与ANLL各亚型之间的关系见表1、表2和表3。

将M1- M5型MPO平均值进行方差分析结果示:M3病例的MPO平均值最高,与其他4组比较差异有统计学意义(P0.05),但与其他3组比较差异有统计学意义(P

7例M2为M2a 5例,M2b2例;6例M4 为M4a 4例,M4b2例;8例M5为M5a 3例,M5b5例。因各亚型病例数限制,未对其两两之间的比较进行统计学分析,但检测其细胞中MPO值的结果(如表3),符合M2b>M2a、M4a>M4b和M5b>M5a趋势。

3 讨论

MPO又称过氧化物酶 ,是一种重要的含铁溶酶体,存在于髓系细胞(主要是中性粒细胞和单核细胞)的嗜苯胺蓝颗粒中,它与过氧化氢和卤化物构成中性粒细胞有效的杀菌系统,在机体的免疫防御过程中发挥重要作用。同时,MPO的3种亚型(MPOⅠ,Ⅱ,Ⅲ)均是DNA结合蛋白,能与DNA形成牢固的复合物,防止其在氧化过程中受损,从而保证髓系细胞的正常分化成熟及功能[7]。随着对MPO研究的深入,人们发现MPO在发挥其免疫防御作用的同时,它与多种致癌物,尤其是芳胺类致癌物的活化有关[8],在膀胱癌、肺癌及胃癌等多种肿瘤的发生、发展过程中发挥作用。

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