何首乌饮对衰老大鼠脑组织细胞p16\p19\p2l表达影响

时间:2022-04-07 01:42:45

何首乌饮对衰老大鼠脑组织细胞p16\p19\p2l表达影响

[摘 要] 目的 通过检测p16、p19、p21在衰老大鼠脑组织中的表达,探讨何首乌饮抗大鼠脑组织衰老的机制。方法 选用8周龄SD大鼠84只,体重180~220克,随机分为正常组、模型组、何首乌饮高、中、低剂量组、何首乌丸剂组、自然恢复组,每组12只,采用D一半乳糖连续腹腔注射建立亚急性衰老大鼠模型。采用Western blotting法检测p16、p19、p21在大鼠脑组织的表达差异。结果 模型组大鼠脑组织p16、p19、p2l表达明显增加;何首乌饮、何首乌丸组能降低p16、p19、p2l表达(P

关键词:何首乌饮 脑组织 衰老 p16、p19、p2l 免疫印迹法 大鼠

中图分类号:R283 文献标识码:B 文章编号:1004-7484(2010)11-0001-03

近年来从分子生物学角度研究细胞衰老,特别是衰老期间有关基因及其调控变化[1-3],已成衰老机理研究的主要倾向。细胞衰老过程是借助于信号转导通路阻滞实现的[4-5],细胞转导通路控制信号至关重要[6-7],处于两个衰老诱导途径核心位置的是几个抑癌基因产物,包括P16、P19及 P21抑癌蛋白。当这些途径所涉及的关键调节因子发生突变,细胞将延缓衰老或绕过衰老程序继续增殖。

补肾方剂何首乌饮由刘河间《宣明论方》何首乌丸加味而成,具有补肝肾、益精血、延年益寿之功效。何首乌饮具有提高脑细胞的增殖能力 [8,9]。本研究通过观察何首乌饮对亚急性衰老大鼠脑细胞p16、p19、p2l表达变化,探讨何首乌饮抗脑衰老的作用机制。

1 材料和方法

1.1 药品与试剂

D一半乳糖,北京化学试剂公司;何首乌饮方剂; p16、p19、p21、β-actin单抗,Santa Cruz公司;预染蛋白分子量标准,上海吉泰新绎生物科技有限公司;SP免疫组织化学试剂盒、HRP一羊抗鼠lgG,北京中杉金桥生物技术有限公司;细胞裂解液、二喹林甲酸 (BCA)蛋白定量试剂盒,上海生工生物工程技术服务有限公司;聚偏二氟乙烯(PVDF)膜,Amersham公司;增强型化学发光(ECL)检测试剂盒,北京泰格美生物有限公司;UNIQ-10柱式Trizol总RNA抽提试剂盒,杭州博日科技有限公司。

1.2 方法

1.2.1 药物准备:何首乌饮方剂由何首乌(炙)、肉苁蓉、怀牛膝、淫羊霍、丹参、茯苓按3:2:3:2:5:3配比,何首乌丸方剂由何首乌(炙)、肉苁蓉、怀牛膝按3:2:3配比。两药分别加5倍蒸馏水浸泡1h,水煎2次,每次30min,滤过。两次滤液合并,浓缩至含生药分别为2.06、2.40、4.80、9.60 kg/L(分别作为丸剂,低、中、高剂量药液)。4℃保存,给药前复温至25℃~30℃。

1.2.2 建立模型及分组:选用8周龄清洁级SD大鼠84只(由河北医科大学实验动物中心提供),雌雄各半,体重180~220克,随机分组。正常组(N)12只,腹腔注射生理盐水(0.5mL/100g)60d,其余动物用生理盐水配制的6%D•半乳糖溶液[按300mg/(kg•d)]连续腹腔注射60d。进行Morris水迷宫行为学实验判断造模是否成功。将造模成功的亚急性衰老大鼠随机分为模型组(M)、何首乌饮低剂量(Td)组、何首乌饮中剂量(Tz)组、何首乌饮高剂量(Tg)组、何首乌丸剂(Tw)组、自然恢复(SR)组,每组12只。药物灌胃,自然恢复组每天灌胃等量的生理盐水,连续60d。

1.2.3 标本的采集及处理:大鼠用10%的水合氯醛麻醉,断头取出脑组织,迅速投入到液氮中待用。

1.2.4 免疫印迹:将一定量脑组织加入预冷的0.01mol/L PBS液(含lmmol/L NaF)中匀浆,4℃,3 000r/min离心5min,弃上清。在沉淀中加入细胞裂解液,冰上反应40min,每5min振荡30s,40C,12 000r/min离心20min,取上清,-20℃备用。用BCA蛋白定量试剂盒检测蛋白浓度。蛋白变性,上样,SDS-PAGE电泳,恒流电转至PVDF膜上。5%脱脂牛奶室温封闭2h。p16、p19、p21一抗(1:200)孵育4℃过夜。TBST洗膜3次,10min/次。加入HRP标记的羊抗鼠IgG(1:1 000),摇床室温孵育1h,TBST洗膜3次,5min/次。ECL检测试剂盒显色2min,暗盒中曝光1~3min,显影、定影。将条带扫描后输入图像分析系统,结果与β-actin蛋白表达水平相比较,用软件Bandscan5.0进行灰度分析。

1.3 统计学分析 用SPSSl 1.0软件进行统计学处理,测定各实验组的结果用均值4-标准差(孟4-s)表示,采用t检验,两两之间用q检验。

2 结果

模型组大脑皮质P16、P19、P21蛋白的表达明显升高,与正常组比较有显著性差异( P 0.05 );何首乌饮、何首乌丸组大鼠脑皮质P16、P19、P21蛋白的表达明显低于模型组( P < 0.01)。其中何首乌饮高剂量组明显好于其余各组( P < 0.0 5),见表1,图1,2。

3 讨论

衰老细胞周期常阻滞于G1/S期或G2/M期,尤其是G1末期的限制性调控点“R”点的阻滞。

抑制素诱导细胞衰老是通过E2F 实现的[10] 。p16通过与cyclin D竞争结合CDK4-6来抑制CDK4-6的活性,从而导致Rb非磷酸化,非磷酸化的Rb与E2F的启动子结合,通过阻断E2F的反式激活域或引进组蛋白脱乙酰化酶抑制E2F的转录,阻止细胞进入S期,使细胞周期停滞。p16基因水平的升高是衰老的原因。将野生型p16 cDNA 导入该基因缺失的细胞系可使细胞周期阻滞在Gl/S期[ 11 ]。

Molofsky等则认为细胞周期的调控是 p16和 P19共同的结果[12,13 ] 。p21 基因是一种细胞周期抑制因子 [14]。p19的表达可阻抑mdm2往返于细胞核-胞质。细胞周期蛋白依赖性激酶抑制剂 p21 是重要的细胞周期调节基因,是引起G1期阻滞的直接原因。p21在阻滞细胞进入S,停滞于G期起着重要作用。

本研究显示:衰老大鼠大脑皮质P16、P19、P21蛋白表达明显升高;而何首乌饮能够降低衰老大鼠大脑皮质P16、P19、P21蛋白的表达。p21 是重要的细胞周期调节基因,是引起G1期阻滞的直接原因。p21表达的降低使细胞由G1期顺利进人S期。使衰老细胞转导阻滞被解除。从而延缓衰老。

参考文献

[1] SinclairDA, Guarente L. Unlocking the secrets of longevity genes[J]. SciAmer, 2006, 294:48-57.

[2] Troen BR. A revolution for aging research[J]. Biogerontol, 2006, 7: 269-277.

[3] Sinclair DA, L in SJ, Guarente L. L ife2span extension in yeast[J]. Science, 2006, 312:195-196.

[4] Bringold F, Serrano M. Tumor suppressors and oncogenes in cellular senescence[J]. Exp Gerontol, 2000,35:317-329.

[5] Lundberg AS, Hahn WC, Gupta T et al. Genes involved in senescence and mmortalization[J]. Curr Opin Cell Biol, 2000, 12:705-709.

[6] Huschtscha Li ,ReddelRR.p16(INK4a)and the control of cellular proliferative life span[J].Carcinogenesis,1999,20(6):921-926.

[7] Kamijo T,Zindy F,Roussel MF,et a1.Tumor suppression at the mouse INK4a locus mediated by the alternative reading frame product p19ARF[J].Cell,1997,91(5):649-659.

[8] Chn ZhH,Gao FL,Pang XJ,et a1.The effect of Tianninnyin on proliferation and apoptosis of germ cell in testes of sub-acutely aging rats[J].Chinese Journal of Gerontology,2004,24(4):347-349.

[9] Xue JF.Song ChJ,Li J,et a1.Effects of traditional Chinese medicine Tiannianyin on PCNA expression and related factors 0f spermatogenie cells in testis of aging rate[J].Lishizhen Medicine and Materia Medica Research,2006,17(11):2161-2163.

[10] Ship ra Rastogi , Bharat Joshi , PiyaliDasgup ta et al. Pro-hibitin Facilitates Cellular Senescence by Recruiting Spe-cific Corep ressors To Inhibit E2F Target Genes[ J ]. Mol Cell Biol,2006, 26 (11):4161-4171.

[11] Qin Y,Liu JY,Li B,et al. ImPaet of p16ink4a and p151nk4b on human hepatocellular carcinoma cell proliferation and apoptosis[J]. Zhonghua Yi Xue Za Zhi,2004,(21):132-137.

[12] Molofsky AV, He S, Bydon M, et al. Pardal R.Bmi-1 promotes neural stem cell self-renewal and neural development but not mouse growth and survival by rep ressing the p16 Ink4a and p19Arf senescence pathways. Genes Dev, 2005, 19 ( 12 ) : 1432-1437.

[13] Sophia W. M. Bruggeman, Merel E. Valk - L ingbeek ,et al. Ink4a and Arf differentially affect cell p roliferation and neural stem cell self-renewal in Bmi1-deficient mice [J]. Genes Dev, 2005, 19 (12):1438-1443.

[14] Itahana K, Dimri G, Campisi J . Regulation of cellular senescence by p53[J ] . Eur J Biochem , 2001 , 268 (10):2784-2791.

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